сотрудник
г. Казань, Россия
УДК 632.4 Грибные болезни растений
УДК 632.9 Борьба с болезнями и вредителями растений
Целью исследований была сравнительная оценка использования биологического препарата Бактофит и химического препарата Скор в защите сортов вишни обыкновенной от коккомикоза в Республике Татарстан. Опыты проводили в 2020-2021 гг. Объектами изучения были сорта вишни обыкновенной (Prunus cerasus L.) Нижнекамская – раннего срока созревания, Шакировская – среднего срока созревания и Обильная – позднего срока созревания. Растения вишни обрабатывали после окончания цветения, после 18 часов вечера биологическим препаратом Бактофит 4 раза через 7 дней, химическим препаратом Скор – 2 раза через 14 дней. Концентрация раствора Скор составила 2 мл/10 л, Бактофита – 30 мл/10 л. Контрольные растения вишни препаратами не обрабатывали. Вегетационные периоды 2020-2021 гг. были засушливыми. В 2020 г. гидротермический коэффициент (ГТК) за вегетацию составил 0,64, за летний период – 0,57. ГТК за вегетационный период 2021 г. был равен 0,48, за летние месяцы – 0,19. В Республике Татарстан в 2020-2021 гг. сорт вишни Нижнекамская (25%) поражался коккомикозом меньше сортов Шакировская (36,7%) и Обильная (30%). Биологическая эффективность химического препарата Скор (67,3%) выше биологического препарата Бактофит (59,2%). Разница в проценте пораженных листьев коккомикозом между контрольными растениями и обработанными растениями была достоверной. Доля влияния препаратов на поражаемость листьев вишни коккомикозом составляет 38,2%, доля влияния сортов – 3,2%, доля влияния условий года – 0,2%, доля влияния взаимодействия препаратов с сортами – 29,5%, доля влияния взаимодействия препаратов с условиями года – 3,7%, доля влияния взаимодействия сортов с условиями года – 9,8%, доля влияния взаимодействия препаратов, сортов и условий года – 13,0%. Развитие коккомикоза на листьях вишни в среднем за 2020-2021 гг. варьировало от 14,9% у сорта Нижнекамская до 25,5% - у сорта Шакировская. Заболевание получило значительно меньшее развитие при обработке растений вишни химическим препаратом Скор. Обработка растений сорта Нижнекамская химическим препаратом Скор дает наибольшую, достоверную прибавку продуктивности. В селекции вишни на устойчивость к коккомикозу рекомендуется использовать сорт Нижнекамская.
вишня обыкновенная (Prunus cerasus L.), сорт, химический препарат Скор, биологический препарат Бактофит, коккомикоз, поражаемость, продуктивность
Введение. Во многих странах мира наиболее опасными заболеваниями вишни являются коккомикоз (Coccomyces hiemalis Higg., синоним Blumeriella jaapii (Rehm) Arx) [1, 2, 3] и монилиоз (Monilinia fructigena Pers.) [4, 5]. На пораженных коккомикозом листьях с лицевой стороны появляются мелкие красновато-бурые пятна, которые сначала постепенно увеличиваются в размерах, а через некоторое время превращаются в некротические образования. С нижней стороны листа пятна покрываются белыми подушечками конидиального спороношения гриба. При поражении коккомикозом происходит преждевременное пожелтение и опадание листьев (до 80%), что ведет к ослаблению деревьев и нередко к их вымерзанию зимой. Симптомы заболевания также могут проявляться на молодых побегах, плодоножках и самих плодах. На плодах образуются вдавленные коричневые пятна с белесоватым налётом, а сами плоды теряют вкус и засыхают [1].
Устойчивость к возбудителю коккомикоза у образцов рода Prunus L. обычно доминирует и контролируется моно-, олиго- и полигенно. Проявление признака зависит от использования устойчивых образцов в качестве материнских или отцовских форм. Выявлено доминирование устойчивости у P. serrulata и P. maximowiczii (вишня Максимовича). Показано, что устойчивость наиболее популярного донора (вишни Маака) экспрессируется во втором и в третьем поколениях гибридов [6, 7].
Blumeriella jaapii (Rehm) Arx) является возбудителем пятнистости листьев вишни (CLS), наиболее серьезного заболевания вишни на Среднем Западе США. Первый высококачественный геном B. jaapii получен с помощью гибридной сборки длинных прочтений PacBio и коротких прочтений Illumina. Собранный проект генома B. jaapii составляет 47,4 Мб и состоит из 95 контигов со значением N50 1,5 Мб [8].
Секвенирование гена sdhB устойчивых изолятов Blumeriella jaapii (Rehm) Arx) привело к обнаружению аминокислотной мутации H260R, которая, как известно, придает устойчивость к фунгициду Боскалид другим фитопатогенным грибам. Возникновение мутации H260R в популяциях B. jaapii в штате Мичиган США коррелирует со снижением их чувствительности к Боскалиду, наблюдаемым в коммерческих садах [9].
В Тамбовской области сильно восприимчивыми к коккомикозу сортами являются Владимирская, Тамарис, Апухтинская и Морозовка; средне восприимчивыми сортами - Жуковская, Прима, Лебедянская, Тургеневка, Десертная Морозовой и Харитоновская. Достаточно высокую устойчивость к данному заболеванию проявили сорта Молодежная и Кентская [1].
В Орловской области уровень устойчивости к коккомикозу выше, чем у контрольного варианта, показали генотипы Подарок учителям, ЭЛС 84847, Новелла, ОС 84735, Муза, Быстринка [10]. Среди сортов селекции ВНИИСПК наибольшую устойчивость к коккомикозу проявили Ровесница, Ветеранка и Гуртьевка, а среди интродуцированных сортов наиболее устойчивой к коккомикозу оказалась Ночка [11].
Горизонтальная (расонеспецифическая) устойчивость является наиболее долговременной, и нахождение параметров её определяющих – одно из важных направлений при выделении хозяйственно ценных генотипов растений. Проведенная оценка генотипов черешни и вишни в Краснодарском крае по среднему количеству пустул на 1 см2 листа, индексу устойчивости к коккомикозу, генеративной активности гриба показала разницу в поражении растений и спорообразовании. Из 77 форм выделено по изученным показателям 6 сортов и форм черешни и вишни и 5 гибридов. Среди них сорта Бигарро Оратовского, клон черешни Космическая, вишня 3-33-34, Южанка, гибриды БИ 43-1, 6/4 К, 6/8 К, БИ 43 I и другие [12].
В Краснодарском крае по результатам исследований Т.А. Копниной и Р.Ш. Заремук [13] выделены сорта и гибридные формы вишни обыкновенной, обладающие достаточно высокой устойчивостью к коккомикозу – Азлания, Новелла, Фея, Тамарис, Самсоновка, Английская ранняя, Тимати, Дюк Ходоса, 17-3-18, 17-3-31, 17-3-42, 17-3-38, 17-6-58.
Влияние погодных стресс-факторов последних лет в Краснодарском крае привели к значительному ослаблению деревьев косточковых культур, снижению их защитного потенциала, и это обусловило повышенную восприимчивость плодовых растений к вредным организмам. Выявлена устойчивая тенденция дальнейшего усиления агрессивности доминантных патогенов. На сортах вишни и черешни всех групп устойчивости отмечается образование большого количества апотециев зимующей стадии возбудителя коккомикоза, значительно превышающего критический уровень вредоносности [14].
Сорт вишни Montmorency, основной сорт, выращиваемый в Соединенных Штатах, очень восприимчив к пятнистости листьев (CLS). Для борьбы с этим заболеванием может потребоваться до 10 опрыскиваний фунгицидами за каждый вегетационный период. Поэтому создание устойчивых к CLS сортов вишни является главным приоритетом селекции. [15].
В защите растений вишни от коккомикоза используются химические препараты – Бордосская жидкость, Скор, Топаз, Топсин М, Фундазол [16], Флуопирам (FluoR), Флуксапироксад (FluxR), Боскалид (BoscR) [3, 8, 17] и биологические препараты – Трихофит, Фитолавин, Фитоспорин М [16].
Цель исследований – сравнительная оценка эффективности применения биологического препарата Бактофит и химического препарата Скор в защите сортов вишни обыкновенной от коккомикоза в Республики Татарстан.
Материалы и методы исследований. Исследования были проведены в 2020-2021 гг. в Татарском НИИ сельского хозяйства – обособленное структурное подразделение «Федерального исследовательского центра «Казанского научного центра Российской академии наук». Сад изучения сортов, элитных и отборных форм вишни заложен в 2004–2005 гг. Почвы в саду среднесуглинистые, коричнево-серые, лесные. Схема посадки 4 × 4 м. Повторность опытов – трехкратная. Весной 2020 г. и 2021 г. было внесено 100 кг аммиачной селитры на 1 га. Объектами изучения были сорта вишни обыкновенной (Prunus cerasus L.) селекции Татарского НИИСХ: Нижнекамская – раннего срока созревания, Шакировская – среднего срока созревания и Обильная – позднего срока созревания.
Вегетационные периоды 2020-2021 гг. были засушливыми. В 2020 г. гидротермический коэффициент (ГТК) за вегетацию составил 0,64, за летний период – 0,57. ГТК за вегетационный период 2021 г. был равен 0,48, за летние месяцы – 0,19. Погодные условия были неблагоприятными для развития коккомикоза.
Учет поражаемости сортов вишни коккомикозом проводили по следующей шкале: 0 – поражения нет; 1 балл – на листьях мелкие единичные пятна, ярко-малинового цвета; 2 балла – поражено до 10% листьев, пятна на листьях разбросаны небольшими группами; 3 балла – поражено до 25% листьев, пятна сконцентрированы вдоль жилок, на обратной стороне листьев заметно слабое спороношение; 4 балла – поражено до 50% листьев, пятна слившиеся, темно-бордовой окраски, с обратной стороны листьев заметно четкое спороношение, начинается единичное опадение листьев; 5 баллов – поражено свыше 50% листьев, пятна слившиеся, бурые, ткань листа может частично выпадать, отмечается массовое опадение листьев [18].
Биологическую эффективность химического и биологического препаратов рассчитывали по формуле:
BE = К – b , где
К
BE – биологическая эффективность, %;
К – интенсивность развития заболевания в контроле, %;
b – интенсивность развития заболевания в варианте опыта, %.
Показатель «Развитие коккомикоза» определяли по формуле:
R= ∑ (a × b) × 100%, где
N × K
а – число больных листьев,
b – соответствующий им балл поражения,
N – общее количество больных и здоровых листьев,
К – высший балл шкалы учета – 5.
Продуктивность сортов вишни определяли в соответствии с «Программой и методикой сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур» [18].
Растения вишни обрабатывали химическим препаратом Скор (Skor®) и биологическим препаратом Бактофит. Скор – фунгицидный препарат системного действия. Он производится швейцарской фирмой Сингента (Syngenta AG). В препарате содержится действующее вещество дифеноконазол. Действие препарата наступает через 2 часа после обработки. Защита растений вишни происходит в течение 2 недель [17]. Биопрепарат Бактофит, СК получен в ООО ПО «Сиббиофарм». Действующими веществами Бактофита являются: споры и клетки культуры штамма ИПМ-215 Bacillus subtilis, метаболиты, обладающие антагонистическими и антибиотическими свойствами. Биопрепарат не вызывает формирования устойчивости у микроорганизмов.
Растения вишни обрабатывали после окончания цветения, после 18 часов вечера биологическим препаратом Бактофит 4 раза через 7 дней, химическим препаратом Скор – 2 раза через 14 дней. Концентрация раствора Скор составила 2 мл /10 л, Бактофита – 30 мл/10 л. Контрольные растения вишни препаратами не обрабатывали. Результаты исследований были статистически обработаны методами двухфакторного и трехфакторного дисперсионных анализов с использованием «Пакета программ статистического и биометрико – генетического анализа в растениеводстве и селекции AGROS».
Результаты и обсуждения. В 2020 г. листья контрольных вариантов вишни Нижнекамская, Шакировская и Обильная были поражены коккомикозом средне – 30-40% (табл. 1). Двукратная обработка химическим препаратом Скор растений вишни в среднем оказалась достоверно эффективнее четырёхкратной обработки биологическим препаратом Бактофит на 3,3%. Биологическая эффективность препарата Бактофит при обработке сорта вишни Нижнекамская составила 66,7%, у сорта Шакировская – 50%, сорта Обильная – 57,1%. После обработки биопрепаратом Бактофит растения вишни были значительно меньше поражены коккомикозом по сравнению с контролем (табл. 1). Биологическая эффективность химического препарата Скор при опрыскивании сорта вишни Нижнекамская была равна 66,7%, у сорта Шакировская – 62,5%, сорта Обильная – 71,4%. Обработка растений вишни химическим препаратом Скор вызвала существенно меньшее поражение листьев коккомикозом по сравнению с контролем и биологическим препаратом Бактофит. Сорт вишни Нижнекамская был значительно меньше поражен коккомикозом по сравнению с сортами Шакировская и Обильная (табл. 1). В 2020 г. двухфакторный дисперсионный анализ показал, что доля влияния препаратов на поражаемость листьев коккомикозом составила 87,2%, доля влияния сортов вишни – 9,6%, доля влияния взаимодействия препаратов с сортами – 1,0%.
Таблица 1 – Поражаемость листьев вишни коккомикозом, %. 2020 г.
Сорт (фактор В) |
Нижнекамская |
Шакировская |
Обильная |
Средняя |
Вариант (фактор А) |
||||
Контроль |
30,0 |
40,0 |
35,0 |
35,0 |
Бактофит |
10,0 |
20,0 |
15,0 |
15,0 |
Скор |
10,0 |
15,0 |
10,0 |
11,7 |
Средняя |
16,7 |
25,0 |
20,0 |
|
НСР05 А НСР05 В |
|
|
|
2,1 2,1 |
В 2021 г. листья у сортов вишни контрольного варианта были поражены коккомикозом средне (20-33,3%) и меньше, чем в 2020 г. (табл. 2). Контрольные растения сортов вишни были поражены коккомикозом достоверно сильнее, чем обработанные препаратами. Разница в поражаемости листьев у сортов вишни при обработке биологическим и химическим препаратами была незначительной. Биологическая эффективность препарата Бактофит составила у сорта вишни Нижнекамская 75%, у сорта Шакировская – 55%, сорта Обильная – 60%. Биологическая эффективность химического препарата Скор у сорта вишни Нижнекамская была равна 75%, у сорта Шакировская – 70%, сорта Обильная – 60%. Двухфакторный дисперсионный анализ в 2021 г. показал, что доля влияния препаратов на поражаемость листьев коккомикозом была меньше, чем в 2020 г. и составила 76,2%, влияния сортов – 17,5%, взаимодействия препаратов и сортов – 2,9%.
Таблица 2 – Поражаемость листьев вишни коккомикозом, % (2021 г.)
Сорт (фактор В) |
Нижнекамская |
Шакировская |
Обильная |
Средняя |
Вариант (фактор А) |
||||
Контроль |
20,0 |
33,3 |
25,0 |
26,1 |
Бактофит |
5,0 |
15,0 |
10,0 |
10,0 |
Скор |
5,0 |
10,0 |
10,0 |
8,3 |
Средняя |
10,0 |
19,4 |
15,0 |
|
НСР05 А НСР05 В |
|
|
|
2,2 2,2 |
В среднем за 2020-2021 гг. листья у сорта вишни Нижнекамская поражались коккомикозом существенно меньше, чем у сортов Шакировская и Обильная (табл. 3). Биологическая эффективность химического препарата Скор (67,3%) оказалась выше биологического препарата Бактофит (59,2%). Трехфакторный дисперсионный анализ дал следующие результаты. Доля влияния препаратов на поражаемость листьев вишни коккомикозом составляет 38,2%, доля влияния сортов – 3,2%, доля влияния условий года – 0,2%, доля влияния взаимодействия препаратов с сортами – 29,5%, доля влияния взаимодействия препаратов с условиями года – 3,7%, доля влияния взаимодействия сортов с условиями года – 9,8%, доля влияния взаимодействия препаратов, сортов и условий года – 13,0%.
Таблица 3 - Поражаемость листьев вишни коккомикозом, % (среднее 2020-2021 гг.)
Сорт (фактор В) |
Нижнекамская |
Шакировская |
Обильная |
Средняя |
Вариант (фактор А) |
||||
Контроль |
25,0 |
36,7 |
30,0 |
30,6 |
Бактофит |
7,5 |
17,5 |
12,5 |
12,5 |
Скор |
7,5 |
12,5 |
10,0 |
10,0 |
Средняя |
13,3 |
22,2 |
17,5 |
|
НСР05 А НСР05 В |
|
|
|
1,4 1,4 |
Развитие коккомикоза на листьях вишни в среднем за 2020-2021 гг. варьировало от 14,9% у сорта Нижнекамская до 25,5% - у сорта Шакировская (табл. 4). Заболевание получило значительно меньшее развитие при обработке растений вишни химическим препаратом Скор.
Таблица 4 – Развитие коккомикоза на листьях вишни, % (среднее 2020-2021 гг.)
Сорт (фактор В) |
Нижнекамская |
Шакировская |
Обильная |
Средняя |
Вариант (фактор А) |
||||
Контроль |
14,9 |
25,5 |
19,1 |
19,8 |
Бактофит |
2,5 |
8,9 |
5,3 |
5,6 |
Скор |
2,5 |
5,3 |
4,0 |
3,9 |
Средняя |
6,6 |
13,2 |
9,5 |
|
НСР05 А НСР05 В |
|
|
|
0,6 0,5 |
В 2020 г. низкая продуктивность у изучаемых сортов вишни была вызвана холодной погодой и сильными ветрами во время цветения. В 2021 г. отрицательное влияние на продуктивность сортов вишни оказали сильные морозы (до -39оС) в январе. Контрольные растения вишни показали в среднем за 2020-2021 гг. среднюю продуктивность у сорта Нижнекамская, низкую продуктивность – у сортов Обильная и Шакировская (табл. 5). Не смотря на обработку растений вишни биопрепаратом Бактофит и химическим препаратом Скор продуктивность у сорта Обильная осталась низкой (3,7-4,1 кг/куст). Обработка растений сорта Нижнекамская препаратом Скор дала наибольшую, достоверную прибавку продуктивности: 0,7 кг/куст.
Таблица 5 – Продуктивность сортов вишни, кг/куст. (среднее 2020-2021 гг.)
Сорт (фактор В) |
Нижнекамская |
Шакировская |
Обильная |
Средняя |
Вариант (фактор А) |
||||
Контроль |
6,3 |
4,6 |
3,5 |
4,8 |
Бактофит |
6,6 |
5,0 |
3,7 |
5,1 |
Скор |
7,0 |
5,2 |
4,1 |
5,4 |
Средняя |
6,6 |
4,9 |
3,8 |
|
НСР05 А НСР05 В |
|
|
|
0,2 0,3 |
Выводы. В Республике Татарстан в 2020-2021 гг. сорт вишни Нижнекамская (25%) поражался коккомикозом меньше сортов Шакировская (36,7%) и Обильная (30%). Биологическая эффективность химического препарата Скор (67,3%) выше биологического препарата Бактофит (59,2%). Разница в проценте пораженных листьев коккомикозом между контрольными растениями и обработанными растениями была достоверной. Доля влияния препаратов на поражаемость листьев вишни коккомикозом составляет 38,2%, доля влияния сортов – 3,2%, доля влияния условий года – 0,2%, доля влияния взаимодействия препаратов с сортами – 29,5%, доля влияния взаимодействия препаратов с условиями года – 3,7%, доля влияния взаимодействия сортов с условиями года – 9,8%, доля влияния взаимодействия препаратов, сортов и условий года – 13,0%. Развитие коккомикоза на листьях вишни в среднем за 2020-2021 гг. варьировало от 14,9% у сорта Нижнекамская до 25,5% - у сорта Шакировская. Заболевание получило значительно меньшее развитие при обработке растений вишни химическим препаратом Скор. Обработка растений сорта Нижнекамская химическим препаратом Скор дает наибольшую, достоверную прибавку продуктивности. В селекции вишни на устойчивость к коккомикозу рекомендуется использовать сорт Нижнекамская.
1. Тихонов А. Г., Каширская Н. Я. Оценка устойчивости сортов вишни к коккомикозу – основа современного дифференцированного подхода к системе защиты вишневого сада // Плодоводство и ягодоводство России. 2014. Т. 38. № 2. С. 151-157. EDN: RRTIWB
2. Stegmeir, T., Schuster, M., Sebolt, A., Rosyara, U., Sundin, G. W., & Iezzoni, A. (2014). Cherry leaf spot resistance in cherry (Prunus) is associated with a quantitative trait locus on linkage group 4 inherited from P. canescens. Molecular Breeding, 34(3), 927–935. https://doi.org/10.1007/s11032-014-0086-3
3. Božić, V., Vuković, S., Lazić, S., Šunjka, D. and Žunić, A. (2021). Control of Blumeriella jaapii and determination of fungicide residues in sour cherry fruits. Acta Hortic. 1308, 345-348. https://doi.org/https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2021.1308.49
4. L. F. Yin, G. K. Chen, S. N. Chen, S. F. Du, G. Q. Li, and C. X. Luo. First Report of Brown Rot Caused by Monilia mumecola on Chinese Sour Cherry in Chongqing Municipality, China // Plant disease. 2014. T. 98. № 7. P. 1009. https://doi.org/10.1094/PDIS-01-14-0029-PDN
5. Насонова Г. В. Проблема борьбы с монилиозом на вишне и пути ее решения // Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2017. №3. С. 65-73. https://doi.org/https://doi.org/10.24411/2218-5275-2017-00018
6. Ленивцева М. С., Радченко Е. Е., Кузнецова А. П. Генетическое разнообразие сортов косточковых культур (род Prunus L.), устойчивых к коккомикозу // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 5. С. 895-904. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.5.895rus. EDN: ZRXNXX
7. Спивак В. В., Бурменко Ю. В. Проблемы создания селекционного материала подрода Cerasus (Mill.) A. Gray с устойчивостью к коккомикозу (Blumeriella jaapii (Rehm) Arx) // Плодоводство и ягодоводство России. 2023. №73(1). С. 7-16. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2023-73-7-16
8. Peng J, Rojas JA, Sang H, Proffer TJ, Outwater CA, Vilgalys R, Sundin GW. Draft Genome Sequence Resource for Blumeriella jaapii, the Cherry Leaf Spot Pathogen. Phytopathology. 2020 Sep; 110(9): 1507-1510. https://doi.org/https://doi.org/10.1094/PHYTO-03-20-0082-A. Epub 2020 Jul 9. PMID: 32338196.
9. Cory A. Outwater, Tyre J. Proffer, Nikki L. Rothwell, Jingyu Peng, and George W. Sundin. Boscalid Resistance in Blumeriella jaapii: Distribution, Effect on Field Efficacy, and Molecular Characterization. Plant disease. 2019. T. 103. № 6. P. 1112-1118. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-18-1555-RE
10. Устойчивость сортообразцов вишни биоресурсной коллекции ВНИИСПК к грибным заболеваниям / И. Н. Ефремов, А. А. Гуляева, Т. Н. Берлова, А. А. Галькова // Современное садоводство. 2024. № 1. С. 50-59. EDN: CXXKWK
11. Оценка устойчивости сортов вишни генофонда ВНИИСПК к коккомикозу / И. Н. Ефремов, А. А. Гуляева, Т. Н. Берлова, А. А. Галькова, Е. В. Безлепкина // Вестник аграрной науки. 2020. № 3 (84). С. 26-30. https://doi.org/ https://doi.org/10.17238/issn2587-666X.2020.3.26
12. Кузнецова А. П., Ленивцева М. С. Выделение сортов косточковых культур (род Prunus L.), устойчивых к коккомикозу // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021. Т. 69. С. 44-53. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-3-69-44-53. EDN: BEWRZG
13. Копнина Т. А., Заремук Р. Ш. Изучение генресурсов вишни обыкновенной (Cerasus vulgaris L.) в условиях прикубанской зоны садоводства // Научные труды СКФНЦСВВ. 2022. Т. 34. С. 52-57. https://doi.org/https://doi.org/10.30679/2587-9847-2022-34-52-57
14. Мищенко И. Г. Тенденции распространения болезней косточковых культур в климатических условиях Краснодарского края // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2014. № 29. С. 76-87. EDN: SMGFRV
15. Andersen K.L., Sebolt A., Sundin G.W., Iezzoni A.F. Assessment of the inheritance of resistance and tolerance in cherry (Prunus sp.) to Blumeriella jaapii, the causal agent of cherry leaf spot. Plant Pathology. 2018; 67(3): 682-691. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/ppa.12765
16. Дмитриева Н. Ю., Гаврилова А. С. Болезни и вредители плодов. Новейшие препараты для защиты. М.: Эксмо, 2015. 256 с.
17. Gleason, J.; Peng, J.; Proffer, T.J.; Slack, S.M.; Outwater, C.A.; Rothwell, N.L.; Sundin, G.W. Resistance to Boscalid, Fluopyram and Fluxapyroxad in Blumeriella jaapii from Michigan (U.S.A.): Molecular Characterization and Assessment of Practical Resistance in Commercial Cherry Orchards. Microorganisms 2021, 9, 2198. https://doi.org/https://doi.org/10.3390/microorganisms9112198
18. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е. Н. Седова, Т. П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. 608 с.