п.г.т. Усть-Кинельский, Самарская область, Россия
п.г.т. Усть-Кинельский, Самарская область, Россия
Нижегородская область, Россия
п.г.т. Усть-Кинельский, Самарская область, Россия
Цель исследований – повышение морфофункционального статуса новорожденных телят. Материалом для исследований служили высокопродуктивные коровы голштинской породы и полученные от них телята. Для проведения исследований из числа стельных коров после запуска было сформировано 2 группы по 15 голов в каждой (контрольная, опытная) по принципу пар-аналогов. Животным опытной группы через 10 дней после запуска вводили препарат Иммунофарм внутримышечно трехкратно с интервалом в 7 дней в дозе 6,0 мл. У коров исследуемых групп брали кровь до введения препарата и после введения для определения гематологических и биохимических показателей. У телят, полученных от коров ис-следуемых групп, в течение первого часа после рождения проводили оценку морфофункционального статуса (жизнеспособности). На основании проведенных исследований установлено, что использование препарата Иммунофарм в дозе 6,0 мл трехкратно внутримышечно с интервалом в 7 дней через 10 дней после запуска обеспечивает повышение в крови количества гемоглобина на 7,24 г/л, лейкоцитов – на 1,62109/л общего белка – на 0,83 г/л, тромбоцитов – на 195,30109/л, кальция – на 0,74 ммоль/л, глюкозы – на 0,85 ммоль/л, альбуминов – на 4,19%, α-глобулинов – на 3,33% при снижении содержания β-глобулинов – на 4,05%, ферментов АЛаТ и АСаТ – на 14,93 и 14,47% по сравнению с показателями крови животных контрольной группы, что обеспечивает повышение морфофункционального статуса телят, полученных от коров, по следующим показателям: состояние кожного покрова, сокращение продолжительности рефлекса позы стояния на 3,85 минуты, сосательного рефлекса – на 4,02 минуты, повышение показателей, характеризующих развитие костной системы, гематологических показателей и живой массы, что свидетельствует об эффективности использования препарата Иммунофарм для коррекции обмена веществ у высокопродуктивных коров в период сухостоя.
кровь, телята, ферменты, сыворотка, рефлекс, статус, иммуномодулятор
В условиях промышленной технологии производства молока одной из основных задач повышения ее эффективности является увеличение уровня молочной продуктивности коров, количественных и качественных показателей ремонтного молодняка [12, 14].
Решение данных проблем в сложившихся условиях связано с профилактикой нарушений обмена веществ у высокопродуктивных коров, особенно в период сухостоя, что связано с их физиологическим состоянием после лактации и интенсивностью роста плода в этот период [15].
Нарушение обмена веществ у коров перед родами оказывает негативное влияние на течение родов и послеродового периода, показатели жизнеспособности приплода и интенсивность
их роста [1].
Определение метаболических процессов организма коров в период сухостоя возможно через изучение показателей крови как основного индикатора, отражающего уровень обмена веществ. Кровь (соединительная ткань) имеет доминирующее значение в регуляции жизнедеятельности организма и отражает качественные изменения процессов метаболизма. Кровь выполняет основную функцию по поддержанию постоянства гомеостаза [3, 5].
Характер обменных процессов у коров в период сухостоя оказывает влияние на пренатальное развитие плода и во многом предопределяет его структурно-функциональную зрелость [8]. При нарушениях обмена веществ телята рождаются со структурами, не свойственными их гестационному возрасту, что является основной причиной их низкой жизнеспособности, что в дальнейшем не позволяет животному реализовать генетический потенциал роста, развития и продуктивности [6, 7, 18].
В настоящее время для нормализации обменных процессов в организме животных большое значение придается лекарственным препаратам, в состав которых входят неорганические вещества, не обладающие высокой биодоступностью для организма, что не полностью обеспечивает течение метаболических процессов, связанных с подготовкой коров к родам [10, 17].
Вместе с тем в последние годы ряд авторов указывают на то, что использование иммуномодуляторов направлено не только на стабилизацию иммунной системы, но и оказывает благоприятное воздействие на обменные процессы в организме беременных самок [4, 10].
В связи с чем, поиск приемов, повышающих показатели метаболизма у коров в период сухостоя и жизнеспособности телят при рождении, актуален.
Цель исследований – повышение морфофункционального статуса новорожденных телят.
Задачи исследований – изучить гематологические, биохимические показатели крови коров после запуска; определить градиенты крови у коров исследуемых групп через 5 дней после окончания введения препарата Иммунофарм; провести морфофункциональную оценку телят, полученных от коров исследуемых групп.
Материал и методы исследований. Материал для исследований – высокопродуктивные коровы голштинской породы ГУП СО «Купинское» Самарской области.
Для проведения исследований из числа стельных коров после запуска по принципу пар-аналогов было сформировано две группы коров по 15 голов в каждой (контрольная, опытная). Животным опытной группы через 10 дней после запуска вводили препарат Иммунофарм внутримышечно трехкратно с интервалом в 7 дней в дозе 6,0 мл.
Иммунофарм – иммуномодулирующее средство – препарат, содержащий в виде активного начала формальдегид (0,07-0,24%), натрий хлор (0,90-0,95%), дистиллированную воду. Препарат обладает способностью усиливать функцию стволовых клеток костного мозга и стимулировать жизненно важные функции организма за счет воздействия на клеточный иммунитет, кроветворение, обменные энергетические процессы, иммунологический статус организма [9].
У коров контрольной и опытной групп брали кровь для исследований гематологических и биохимических показателей перед началом эксперимента и после окончания введения препарата
(через 5 дней). Кровь брали из хвостовой вены, используя систему «Моновет».
Исследования крови проводили в гематологической лаборатории Самарского ГАУ. Содержание в крови гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов определяли на гемоанализаторе Mindray BC 2800 VET.
Содержание в сыворотке крови кальция, фосфора, глюкозы, каротина, щелочного резерва, общего белка определяли на биохимическом анализаторе Mindray BА-88А. Содержание в сыворотке крови ферментов АсТ и АлТ определяли на биохимическом фотометре Staf fax 1904 с использованием тест-реактивов фирмы «ИФА-Вектор-Бест».
Определение морфофункционального статуса новорожденных телят проводили по тестовой методике Б. В. Криштофоровой [2].
У телят при рождении учитывали следующие показатели: состояние кожного покрова, время реализации позы стояния, количество резцовых зубов (штук), количество лейкоцитов (109/л), эритроцитов (1012/л), расстояние от кончика хвоста до пяточного бугра, расстояние от дистального конца последнего ребра до фронтальной линии плечевого сустава (см), живую массу (кг).
Полученный цифровой материал обработан методом вариационной статистики на определение степени достоверности разницы сравниваемых показателей с использованием критерия Стьюдента, принятым в биологии и ветеринарии, с применением программного комплекса Microsoft Excel 10. Степень достоверности обработанных данных отражена соответствующими обозначениями Р<0,05*; Р<0,01**; Р<0,001***.
Результаты исследований. Гомеостаз является основным показателем, характеризующим морфофункциональное состояние животного, и служит критерием определения наличия патологических процессов в организме или их отсутствия.
Динамика показателей крови позволяет определить интенсивность обменных процессов, а также указывает на степень реакции организма на введение лекарственных препаратов, изменение технологии кормления и содержания животных [13, 17]. Перед началом экспериментальных исследований у коров исследуемых групп изучили гематологические, биохимические и ферментативные показатели крови (табл. 1).
Показатели крови у животных исследуемых групп (сформированных по принципу аналогичности) до начала экспериментальных исследований не имеют различий и находятся в пределах ошибки средней арифметической. Содержание гемоглобина в крови составило 100,23-101,05 г/л, эритроцитов – 5,62-5,64×1012/л, лейкоцитов – 7,16-7,18×109/л, тромбоцитов – 264,45-265,20×109/л.
Гематологические показатели у коров исследуемых групп перед началом исследований соответствуют нижнему порогу референсных значений, что указывает на физиологическое напряжение организма коров после лактации и увеличение в этот период интенсивности роста плода, что согласуется с данными А. С. Ермишина [5].
Таблица 1
Показатели крови коров исследуемых групп (после запуска)
|
Наименование показателя |
Референсные значения |
Группа |
|
|
контрольная |
опытная |
||
|
Количество коров, гол. |
|
5 |
5 |
|
Гемоглобин, г/л |
99-120 |
100,23±0,62 |
101,05±0,74 |
|
Эритроциты, 109/л |
5,0-7,5 |
5,62±0,38 |
5,64±0,41 |
|
Лейкоциты, 1012/л |
4,5-12,0 |
7,18±0,21 |
7,16±0,18 |
|
Тромбоциты, 109/л |
260-700 |
264,45±20,18 |
265,20±21,24 |
|
Общий кальций, ммоль/л |
2,51 |
2,03±0,06 |
2,02±0,07 |
|
Щелочной резерв, об.%СО2 |
50-62 |
41,85±0,36 |
42,02±0,42 |
|
Глюкоза, ммоль/л |
2,0-4,0 |
1,87±0,07 |
1,85±0,09 |
|
Общий белок, г/л |
60-85 |
60,25±1,32 |
60,18±1,25 |
|
Белковые фракции, % |
|||
|
альбумины |
30-50 |
32,44±2,52 |
32,37±2,14 |
|
Глобулины, в т.ч. |
|
67,56±1,72 |
67,63±1,86 |
|
α-глобулины |
12-20 |
12,18±0,43 |
12,16±0,51 |
|
β-глобулины |
10-16 |
21,13±0,55 |
21,09±0,66 |
|
γ-глобулины |
25-40 |
34,25±0,42 |
34,38±0,53 |
|
Ферменты, мг/л |
|||
|
АЛаТ |
60-80 |
104,26±4,16 |
103,96±4,05 |
|
АСаТ |
80-100 |
120,12±3,80 |
119,83±3,75 |
У коров исследуемых групп в начале сухостойного периода содержание в сыворотке крови общего кальция составило 2,02-2,03 ммоль/л, щелочного резерва – 41,85-42,02 об.%СО2, глюкозы – 1,85-1,87 ммоль/л, общего белка – 60,18-60,25 г/л, в том числе альбуминов – 32,37-32,44%, глобулинов – 67,56-67,63%.
Сравнительным анализом фракций глобулинов установлено, что содержание в сыворотке крови α-глобулинов находится на нижнем уровне порога референсных значений и составляет
12,16-12,18%, содержание β-глобулинов превысило пороговый уровень в среднем на 5,09-5,13%. Также отмечалось повышение содержания γ-глобулинов по сравнению с нижним пороговым уровнем референсных значений на 9,25-9,38%.
Увеличение β-глобулинов при снижении кальция, глюкозы указывает на нарушение тканевого обмена и способствует проявлению патологии [3, 7].
Содержание в сыворотке крови ферментов трансанимирования превышало пороговый
уровень референсных значений АЛаТ на 23,96-24,26 мг/л, АСаТ – на 19,83-20,12 мг/л.
Большие значения показателей глобулинов и ферментов трансанимирования в сыворотке крови коров после окончания лактации указывает на напряженность обменных процессов в их организме и является признаками нарушения метаболических процессов [12, 16].
Для определения степени влияния препарата Иммунофарм на показатели крови коров, характеризующих обмен веществ, был проведен сравнительный анализ гематологических, биохимических и ферментативных показателей крови и ее сыворотки у животных исследуемых групп (табл. 2).
В процессе экспериментальных исследований установлено, что показатели крови коров опытной группы больше по содержанию: гемоглобина – на 7,24 г/л, лейкоцитов – на 1,62×109/л, тромбоцитов – на 195,30×109/л, кальция – на 0,74 ммоль/л, щелочного резерва – на 3,88 об.%СО2, глюкозы – на 0,85 ммоль/л, общего белка – на 8,03 г/л, альбуминов – на 4,19%, α-глобулинов – на 3,33% при снижении содержания в сыворотке крови глобулинов на 4,19%, β-глобулинов – на 4,05%, γ-глобулинов – на 3,47%, ферментов АЛаТ – на 14,93%, АСаТ – на 14,47% по сравнению с градиентами контрольной группы.
Таблица 2
Показатели крови и ее сыворотки исследуемых групп коров за 5 дней до отела
|
Наименование показателя |
Референсные значения |
Группа |
|
|
контрольная |
опытная |
||
|
Количество коров, гол. |
|
5 |
5 |
|
Гемоглобин, г/л |
99-120 |
111,40±0,52 |
118,64±0,39** |
|
Эритроциты, 109/л |
5,0-7,5 |
6,12±0,21 |
7,58±0,18 |
|
Лейкоциты, 1012/л |
4,5-12,0 |
7,85±0,28 |
9,47±0,14* |
|
Тромбоциты, 109/л |
260-700 |
340,90±32,42 |
536,20±21,10** |
|
Общий кальций, ммоль/л |
2,51 |
2,34±0,06 |
3,08±0,04 |
|
Щелочной резерв, об.%СО2 |
50-62 |
46,14±0,29 |
50,02±0,16 |
|
Глюкоза, ммоль/л |
2,0-4,0 |
2,50±0,08 |
3,35±0,06* |
|
Общий белок, г/л |
60-85 |
66,18±1,03 |
74,21±0,75** |
|
Белковые фракции, % |
|
|
|
|
альбумины |
30-50 |
40,16±0,66 |
44,35±0,72* |
|
Глобулины, в т.ч. |
|
59,84±0,48* |
55,65±0,53 |
|
α-глобулины |
12-20 |
15,80±0,72 |
19,13±0,48* |
|
β-глобулины |
10-16 |
18,92±0,57* |
14,87±0,61 |
|
γ-глобулины |
25-40 |
25,12±0,46* |
21,65±0,55 |
|
Ферменты, мг/л |
|
|
|
|
АЛаТ |
60-80 |
92,11±2,13*** |
77,18±2,44 |
|
АСаТ |
80-100 |
104,22±2,36*** |
89,75±3,01 |
Для повышения эффективности молочного скотоводства в настоящее время особое внимание уделяется количественным и качественным показателям ремонтного молодняка, которые во многом зависят от жизнеспособности телят при рождении [11, 12].
Согласно тестовой методике Б. В. Криштофоровой [2] новорожденных телят согласно
20-балльной системе по показателям морфофункционального статуса подразделяют на три группы:
I группа – организм телят оценивается на 17-20 баллов. Новорожденный теленок имеет хорошие показатели жизнеспособности и способен к полной реализации генетического потенциала роста, развития;
II группа – организм телят оценивается на 13-16 баллов. Новорожденные телята имеют удовлетворительные показатели жизнеспособности. У таких телят очень часто встречается нарушение функции пищеварения, снижение интенсивности роста;
III группа – организм телят оценивается на 9-12 баллов. Новорожденный теленок имеет неудовлетворительные показатели жизнеспособности. У таких телят наблюдается неадекватная реакция на первое кормление, гипотрофия, погибает до конца 1-3 суток, что подтверждается исследованиями С.В. Мошкина [11].
Сравнительной оценкой градиент жизнеспособности телят, полученных от коров исследуемых групп, установлено, что показатель жизнеспособности телят опытной группы составил
18,8 балла, что на 2,7 балла больше, чем телят, полученных от коров контрольной группы (табл. 3).
Таблица 3
Показатели жизнеспособности телят исследуемых групп
|
Тест |
Референсные значения |
Группа |
||||
|
абсолютная величина |
балл |
контрольная |
опытная |
|||
|
абсолютная величина |
балл |
абсолютная величина |
балл |
|||
|
Состояние кожного волосяного покрова |
волос длинный, |
1,0 |
волос короткий, средней густоты, кожа влажная, эластичность снижена |
0,5 |
волос длинный, |
1,0 |
|
Реализация позы стояния, мин |
до 30 |
2,0 |
32,17±0,76 |
1,5 |
28,32±0,85* |
2,0 |
|
Время проявления сосательного рефлекса, мин |
до 30 |
2,0 |
31,46±0,82 |
1,6 |
27,44±0,61* |
2,0 |
|
Количество зубов на нижней челюсти, шт. |
6-8 |
2,0 |
7,20±0,14 |
2,0 |
7,60±0,16 |
2,0 |
|
Длина последнего ребра, см |
до 5 |
4,0 |
4,40±0,20 |
3,5 |
4,80±0,22 |
3,8 |
|
Расстояние от кончика хвоста до пяточного бугра, см |
0-2 |
6,0 |
2,60±0,18 |
5,5 |
1,60±0,12 |
6,0 |
|
Количество лейкоцитов, 109/л |
8-9 |
1,0 |
7,15±0,16 |
0,5 |
8,64±0,14 |
1,0 |
|
Количество эритроцитов, 1012/л |
7,5-9,0 |
1,0 |
6,40±0,12 |
0,5 |
7,76±0,19* |
1,0 |
|
Живая масса, кг |
38 и 42 |
1,0 |
36,32±0,84 |
0,5 |
39,20±0,92* |
1,0 |
|
Общее количество баллов |
- |
20,0 |
- |
16,1 |
- |
18,8 |
Телята опытной группы превосходили телят контрольной группы по следующим показателям: реализация позы стояния – на 3,85 минут; проявление сосательного рефлекса – на 4,02 минуты; количество зубов на нижней челюсти – на 0,4 штуки; длина последнего ребра – на 0,4 см; длина хвоста – на 1,0 см, количество лейкоцитов в крови – на 1,49×109/л; количество эритроцитов в крови –
на 1,36×1012/л; живая масса – на 2,88 кг.
Заключение. На основании проведенных исследований установлено, что использование препарата Иммунофарм в дозе 6,0 мл трехкратно с интервалом в 7 дней внутримышечно через 10 дней после запуска обеспечивает нормализацию обмена веществ у коров в период сухостоя, о чем свидетельствуют показатели крови и ее сыворотки (увеличение содержание кальция, белка, глюкозы, альбуминов, глобулинов и снижение содержания трансанимированных ферментов АЛаТ и АСаТ до порогового уровня), что обеспечивает улучшение показателей жизнеспособности телят.
1. Баймишев Х. Б. Рост и развитие телок голштинской породы в зависимости от показателей их жизнеспособности при рождении // Известия Самарской ГСХА. 2016. № 4. с. 67-70.
2. Криштофорова Б. В., Баймишев Х. Б., Лемещенко В. В. и др. Биологические основы ветеринарной неонатологии : монография. Кинель : НИЦ Самарской государственной сельскохозяйственной академии, 2013. 500 с.
3. Баймишев М. Х., Баймишев Х. Б., Еремин С. П., Баймишева С. А. Гематологические показатели коров при применении иммуномодулирующих препаратов // Известия Самарской ГСХА. 2019. Выпуск 1. С. 89-94.
4. Еремин С. П., Баймишев М. Х., Баймишев Х. Б. Коррекция метаболических показателей у высокопродуктивных коров иммуномодулятором в сухом виде // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2021. Том 6. № 1. С. 52-57.
5. Ермишин А. С., Тимаков А.В. Биохимические показатели адаптации коров разных пород в условиях Ярославской области // Вестник агропромышленного комплекса Верхневолжья. 2015. №4(32). С. 29-30.
6. Захарьин В. В., Грищук Г. П., Ревунец А. С. Биотехнологические основы морфофункционального статуса новорожденных телят, полученных от коров-первотелок // Ученые записки учебного заведения Витебского ордена "Знак Почета" ГАВМ. 2019. Том 55, № 1. с. 127-130.
7. Иванюк В. П., Бобкова Г. Н. Влияние биохимических показателей крови глубоководных коров на иммунобиохимический статус телят // Известия Оренбургского ГАУ. 2020. № 5(85). с. 156-160.
8. Клетикова Л. В., Мартынов А. Н., Шишкина Н. П. Физиологический статус новорожденных телят голштинской породы // Вестник КрасГАУ. 2019. №8(149). С. 68-74.
9. Патент. 77882A6. Российская Федерация. IPC A61K31/115, A61K9/08. Иммуномодулирующее средство / Ласкавый В. Н., Рыбин В. В. №95119203/14 ; заявка от 21.11.1995 ; опубл. 27.04.1997.
10. Бапимишев Х. Б., Баймишев М. Х., Еремин С. П., Баймишева С. А. Коррекция обмена веществ у коров перед отелом // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2022. Выпуск 1. С. 14-20.
11. Маннова М. С., Клетикова Н. Н., Якименко Н. Н. Морфофункциональная характеристика желудочного комплекса пищеварительной системы новорожденных телят // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2021. № 6(200). с. 56-63.
12. Мошкина С. В. Физиологическое состояние и рост телят при различных технологиях выращивания // Вестник Мичуринского государственного университета. 2021. № 4(67). С. 154-157.
13. Петухова Е. И., Баймишев Х. Б., Афанасьева А. А. Показатели морфофункциональной оценки телят в зависимости от уровня молочной продуктивности их коров-матерей // Достижения и перспективы развития биологической и ветеринарной науки : материалы Всероссийской научно-практической конференции. Оренбург : Оренбургский государственный университет, 2019. С.14-16.
14. Козинец А., Глушко О., Надаринская М. и др. Способы повышения жизнеспособности телят в промышленных условиях // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2018. №11. С. 13-18.
15. Ускова И. В., Баймишев Х. Б. Биотехнологические приемы повышения качества ремонтного молодняка крупного рогатого скота // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2021. Выпуск 1. С. 35-40.
16. Бриджес Р. Нейробиология родительского мозга // Амстердам : Академическая пресса. 2008. с. 584.
17. Баймищев Х. Б., Баймищев М. Х., Еремин С. П., Племяшов К., Конопельцев И., Никитин Г., Анипченко П., Пристяжнюк О. Выбор плаката отдела программы PSVII-17: Репродуктивная функция коров в зависимости от липидного обмена // Journal of Animal Science. 2020. Том 98, № 4. С. 293-294.
18. Вайншток М. Гендерные различия во влиянии пренатального стресса на развитие мозга и поведение // Neu-rochen Res. 2007. Том 32(10). стр. 1730.
