с 01.01.2014 по настоящее время
Тамбов, Тамбовская область, Россия
сотрудник с 01.01.2006 по 01.01.2021
Тамбовская область, Россия
студент
Тамбов, Россия
сотрудник
Национальный исследовательский технологический университет «МИСиС» (старший научный сотрудник)
сотрудник
Тамбов, Тамбовская область, Россия
ВАК 06.03.00 Лесное хозяйство
УДК 57 Биологические науки
В работе проведено исследование влияния оксида графена на регенеранты гибрида тополь белый×осина при переносе их в нестерильные тепличные условия при клональном микроразмножении. Показано, что суспензия наноматериала в концентрации 1.5 мкг/л стимулировала прирост высоты растений гибрида тополь белый × осина, но также увеличивал количество увядших листьев. Увеличение концентрации наноматериала до 3 мкг/л вызывало негативное влияние на проростки. Количество выживших побегов снизилось на 17% относительно контроля, высота растений уменьшилась на 25%. Также наблюдалось уменьшение числа листьев и адаптированных микроклонов – адаптировалось 15% растений против 55% в контроле. Общее состояние проростков данной группы оценивалось только на 3 балла из 5-ти. Анализ бинакопления оксида графена в органах растений не показал выраженных очагов скопления наноматериала. Таким образом, оксид графена оказывал разнонаправленное действие на развитие проростков гибрида тополь белый×осина. Результаты исследования могут быть использованы в ходе оценки экологической безопасности графеноподобных материалов по отношению к растениям, а также для совершенствования биотехнологии клонального микроразмножения лесных культур
оксид графена, биологическое воздействие, древесные культуры, гибрид тополь белый×осина, бионакопление
Введение
В настоящее время наночастицы и наноматериалы находят все большее применение в промышленных и бытовых целях, что отражается в неуклонно увеличивающемся объеме их производства. Это сопровождается присутствием наночастиц в окружающей среде и риском потенциально неблагоприятных воздействий на природные системы. Наночастицы могут попадать в окружающую среду в течение всего жизненного цикла. Рассматриваются три возможных сценария попадания наночастиц в природные экосистемы, в том числе водные: выброс во время производства сырья и продуктов с наночастицами; высвобождение во время использования продукции нанотехнологий; и выделение после захоронения продуктов, содержащих наночастицы [1,2]. Одним из самых распространенных типов наноматериалов являются углеродные наноструктуры – наноразмерные аллотропные модификации углерода, включающие представителей нуль- (квантовые точки, фуллерены), одно- (нанотрубки) и двумерных (графены) типов наночастиц. Их применение возможно практически во всех областях промышленности, сельского хозяйства и медицины, что существенно увеличивает объемы их потенциального поступления в природные экосистемы. Благодаря большому разнообразию структур и уникальным физико-химическим свойствам, на их основе разрабатываются агенты для адресной доставки лекарств, фото- и радио- и генной терапии [3,4], антибактериальные препараты [5], биосенсоры [6,7], сенсоры для мониторинга загрязнений [8], адсорбенты для очистки сточных вод [9] и др.
Проблема воздействия графеноподобных материалов на растения достаточно слабо освещена в русскоязычной научной литературе [10], подавляющее большинство работ по этой теме опубликовано в зарубежных журналах.
В ряде работ показано разнонаправленное действие оксида графена на сельскохозяйственные растения [11-13], при этом часто низкие концентрации оказывают стимулирующее, а высокие – токсическое воздействие.
В нескольких исследованиях сообщалось, что производные графена могут проникать в ткани и клетки [14-19].
Несмотря на наличие работ по оценке влияния наночастиц оксида графена на растительные организмы, исследований эффектов воздействия оксида графена на древесные растения, играющие важнейшую роль в наземных экосистемах, ранее не проводилось, что обусловливает актуальность настоящего исследования. В представляемой работе проведено исследования влияния оксида графена на регенеранты гибрида тополь белый×осина на этапе адаптации побегов к нестерильным условиям теплицы.
Материалы и методы
Синтез и характеризация наноматериала. Наночастицы оксида графена (GO) были получены методом химической эксфолиации графита [20]. Полученный материал исследовали с помощью спектроскопии комбинационного рассеяния (Рамановский микроскоп Thermo DXR (Thermo Scientific, США) с лазером 532 нм при мощности 1 мВт через объектив 100х) и сканирующей электронной микроскопии (микроскоп Vega3, Tescan, Чешская Республика).
Биологическое исследование. Растения регенеранты гибрида тополь белый×осина были получены путем клонального микроразмножения. Для асептического введения в культуру in vitro использовали свежесрезанные в первой декаде июня черенки с апикальными и пазушными почками. В качестве основы питательной среды для микроклонального размножения на этапах введения в культуру и мультипликации был взят состав питательной среды Мурасиге-Скуга [21,22], в которую добавлялись наночастицы оксида графена в концентрации 1,5 мкг/л. На этапе укоренения использовалась среда WPM [23], так же содержащая 1,5 мкг/л наночастиц. Результаты исследования влияния наночастиц оксида графена на ранних этапах клонального микроразмножения показаны в работах [24,25].
На этапе адаптации к нестерильным тепличным условиям использовали выровненные растения, имеющие 4-5 листьев и корневую систему длиной не менее 2 см. Проростки высаживали в технологические кассеты (на 6 ячеек, высотой 5,5 см, объем ячейки - 155 мл.) наполненные увлажненным почвенным субстратом. Субстрат состоял из торфа с нейтральным рН и перлита 3:1. Регенеранты культивировались в условиях парника в течение трёх недель при температуре 20-24 °С, 15-ти часовом фотопериоде, освещённости 4500 Люкс, относительной влажности воздуха 80-90 %. Для создания условий повышенной влажности в парнике применялась туманообразующая установка. Обработку проводили водными растворами, содержащими 1,5 и 3 мкг/л наночастиц, наиболее благоприятно показавшими себя на предыдущих этапах, в момент высадки и спустя 1,5 недели, путем введения препаратов под корень (100 мл раствора на ячейку). В качестве контролей использовались дистиллированная вода и ростовой стимулятор Эпин. Учёт показателей проводили по общепринятым методикам. Анализируемые показатели: количество выживших растений, количество растений адаптированных к нестерильным условиям, морфометрические параметры побегов (высота, число листьев, число увядших листьев, число дополнительных побегов, состояние по пятибалльной шкале).
Эксперимент проводился в 3-ёх кратной повторности, количество растений в каждой из 4-ёх групп («Контроль», «Эпин», «GO 1 мкг/л» и «GO 3 мкг/л») составляло 30, выборки имели независимый характер. Статистическая обработка данных осуществлялась с использованием программы Microsoft Excel 2010 (пакет «Описательная статистика») с применением однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA), достоверность различий вычислялась с помощью F-критерия Фишера при 5%-ном уровне значимости.
Анализ накопления оксида графена в растениях. Важным этапом при оценке экологической безопасности новых препаратов является анализ из бионакопления и распределения в органах растений. В данной работе анализ нанкопления оксида графена в тканях экспериментальных растений осуществлялся на сканирующих электронных микроскопах Neon 40 и Merlin (Carl Zeiss, Германия) с элементным анализом. Для проведения исследования навеску растительной ткани массой 250 мг растирали в охлажденной ступке в 0,5 мл дистиллированной воды. Полученный гомогенат наносили на подложку и высушивали при комнатной температуре
Результаты и обсуждение
Результаты анализа образца оксида графена. Методом рамановской спектроскопии показаны основные линии характерные для оксида графена D (1338 см-1) и G (1590 см-1) [26-28]. В ходе исследования методом сканирующей электронной микроскопии установлено, что образец имеет пластинчатую структуру без каких-либо других видов частиц кристаллизованной фазы.
Влияние оксида графена на проростки гибрида тополь белый × осина. Анализ выживаемости растений регенерантов гибрида тополь белый × осина показал значительное снижение жизнеспособности побегов (-17%) при обработке их раствором оксида графена в концентрации 3 мкг/л (Рис. 1), более низкая доза наноматериала (1,5 мкг/л) не оказала влияния на регенеранты. Максимальный показатель выживаемости отмечен в варианте с эталонным стимулятором роста, прибавка составила 10%.
Рисунок 1. Влияние оксида графена на выживаемость регенерантов гибрида тополь белый × осина
Figure 1. Effect of graphene oxide on the survival rate of regenerated hybrid poplar white × aspen
Источник: собственные вычисления автор(ов)
Source: own calculations
В ходе исследования установлено небольшое стимулирующее действие оксида графена в концентрации 1,5 мкг/л на прирост стебля (Рис. 2), в данном случае высота растений увеличивалась в среднем на 0,4 см относительно контроля, схожие показатели отмечены в варианте с Эпином. Увеличение концентрации наноматериала подавляло рост побегов на 25 %.
Рисунок 2. Влияние оксида графена на рост регенерантов гибрида тополь белый × осина
Figure 2. Effect of graphene oxide on the growth of regenerants of the white poplar × aspen hybrid
Источник: собственные вычисления автор(ов)
Source: own calculations
Максимальное количество листьев (10 шт.) наблюдалось в группе, культивируемой с применением стимулятора роста, в этом же варианте отмечена минимальная доля увядших листьев по отношению к общему числу (Рис. 3). В случае с низкой концентрацией оксида графена количество резвившихся листьев достоверно не отличалось от контрольных значений, однако число увядших листьев было в 2 раза больше, чем в контрольной группе – 4 против 2. При концентрации 3 мкг/л из 4 листьев в среднем увядали 3, что говорит об ингибирующем действии наноматериала.
Рисунок 3. Состояние вегетативных органов регенерантов гибрида тополь белый × осина
Figure 3. The state of the vegetative organs of the regenerants of the hybrid white poplar × aspen
Источник: собственные вычисления автор(ов)
Source: own calculations
Стоит сказать, что на данном этапе все анализируемые показатели снижались при максимальной концентрации оксида графена. Так и количество адаптированных растений в данной группе было на 35% меньше, чем в контрольном варианте (Рис. 4). Наноматериал в дозе 1,5 мкг/л не оказал влияния на адаприруемость регенерантов к нестерильным условиям. Лучшие показатели вновь наблюдались в группе со стимулятором роста – 60%, против 50% в контроле.
В ходе исследования не отмечено появления дополнительных побегов ни в одном из вариантов (Табл. 1). Отличное состояние растений было только в варианте с Эпином, в контрольной и опытной (1,5 мкг/л) группах общее состояние регенерантов оценивалось на 4 балла. Худшее состояние побегов было при максимальной концентрации оксида графена – 3 балла.
По итогам исследования можно сказать, что раствор оксида графена в концентрации 1,5 мкг/л в целом не оказал существенного влияния на растения-регенранты гибрида тополь белый × осина, в то время как при обработке растений раствором, содержащим 3 мкг/л оксида графена отмечено негативное влияние на все анализируемые показатели. Предполагается, что токсическое действие графена связано с накоплением наноматериала в растениях и вызываемым им окислительным стрессом [29-31]. Избыточное производство H2O2 может вызвать существенное торможение роста растений и уменьшение биомассы [32].
Анализ накопления оксида графена в тканях растений. Исследовались растения контрольной группы и растения, обрабатываемые раствором с максимальной концентрацией наноматериала – 3 мкг/л.
Анализ накопления частиц оксида графена в корнях побегов гибрида тополь белый × осина не выявил накопления наноматериала в корнях растений, проходящих адаптацию в среде с максимальным содержанием оксида графена (Рис. 5).
При оценке бионакопления оксида графена в побегах гибрида тополь × осина также не выявил частиц наноматериала в стеблях растений экспериментальной группы (Рис. 6).
Однако, поскольку чешуйки оксида графена визуально могут быть сходны с биологическими структурами, для проверки результатов сканирующей электронной микроскопии, проводилось картирование углерода в тканях растений. На рисунке 7 представлены результаты картирования углерода в корнях и стеблях гибрида тополь белый × осина контрольной и опытной групп.
Как видно из представленных микрофотографий, во всех случаях углерод характеризируется равномерным распределением по всему образцу, независимо от добавления оксида графена в культивационную среду.
Рисунок 4. Эффективность адаптации регенерантов гибрида тополь белый × осина
Figure 4. The efficiency of adaptation of regenerants of the hybrid white poplar × aspen
Источник: собственные вычисления автор(ов)
Source: own calculations
Таблица 1
Показатели эффективности адаптации микроклонов культур гибрида тополь белый × осина
Table 1
Indicators of adaptation efficiency of microclones of cultures of a hybrid white poplar × aspen
|
Вариант | Varaint |
Число дополнительных побегов, шт. Number of extra shoots, pcs. |
Состояние микроклонов по 5-ти бальной шкале | Condition of microclones on a 5-point scale |
|
Контроль | Control |
0 |
4 |
|
Эпин | Epin |
0 |
5 |
|
GO 1,5 мкг/л | GO 1.5 μg/L |
0 |
4 |
|
GO 3 мкг/л | GO 3 μg/L |
0 |
3 |
Источник: собственные вычисления автор(ов)
Source: own calculations
Рисунок 5. Микрофотографии корня гибрида тополь белый × осина: а) контроль, б) группа 3 мкг/л
Figure 5. Micrographs of the root of a hybrid white poplar × aspen: a) control, b) group 3 μg/L
Источник: собственное исследование автор(ов)
Source: author’s study
Рисунок 6. Микрофотографии стебля гибрида тополь белый × осина: а) контроль, б) группа 3 мкг/л
Figure 6. Micrographs of the stem of a hybrid white poplar × aspen: a) control, b) group 3 μ/L
Источник: собственное исследование автор(ов)
Source: author’s study
Таким образом, наше исследование показало отсутствие аккумуляции оксида графена в проростках гибрида тополь белый×осина. При этом в литературе описывается проникновение этого материала в другие растения, например, в проростки гороха, через корневую систему [14,15]. Вероятно, отмеченные различия связаны с разным размером чешуек использованного наноматериала и/или с видовыми особенностями растений.
Выводы (Заключение)
Таким образом, в ходе исследования установлено положительное влияние раствора оксида графена в концентрации 1.5 мкг/л на развитие стебля гибрида тополь белый × осина, но при этом наблюдалось увеличение количества увядших листьев. Повышение концентрации наноматериала до 3 мкг/л вызывало негативное влияние на проростки. Количество выживших побегов снизилось на 17% относительно контроля, высота растений уменьшилась на 25%. Также наблюдалось уменьшение числа листьев и адаптированных микроклонов. Анализ бинакопления оксида графена в органах растений, обработанных максимальной концентрацией оксида графена, не показал выраженных очагов скопления наноматериала.
Можно заключить, что оксид графена оказывал разнонаправленное действие на развитие проростков гибрида тополь белый×осина, при этом его бионакопления в растениях не обнаружено.
Результаты исследования могут быть использованы в ходе оценки экологической безопасности графеноподобных материалов по отношению к растениям, а также для совершенствования биотехнологии клонального микроразмножения лесных культур.
Рисунок 7. Распределение углерода в тканях корня и стебля гибрида тополь белый × осина: а) корень растений контрольной группы в) стебель растений контрольной группы, б) корень растений группы 3 мкг/л, г) стебель растений группы 3 мкг/л
Figure 7. Distribution of carbon in the tissues of the root and stem of the hybrid white poplar × aspen: a) the root of the plants in the control group, c) the stem of the plants in the control group, b) the root of the plants in the 3 μg/L group, d) the stem of the plants in the 3 μg/L group
Источник: собственное исследование автор(ов)
Source: author’s study
1. Jahan S., Yusoff I.B., Alias Y.B., Bakar A.F.B.A. Reviews of the toxicity behavior of five potential engi-neered nanomaterials (ENMs) into the aquatic ecosystem. Toxicology Reports. 2017;4:211-20. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.toxrep.2017.04.001
2. Tolaymat T., El Badawy A., Genaidy A., Abdelraheem W., Sequeira R. Analysis of metallic and metal oxide nanomaterial environmental emissions. Journal of Cleaner Production. 2017;143:401-12. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.jclepro.2016.12.094
3. Ganguly S., Ray D., Das P., Maity P.P., Mondal S., Aswal V.K., Dhara S., Ch Das N. Mechanically robust dual responsive water dispersible-graphene based conductive elastomeric hydrogel for tunable pulsatile drug release. Ultrasonics Sonochemistry. 2018;42:212-27. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2017.11.028
4. Goenka S., Sant V., Sant S. Graphene-based nanomaterials for drug delivery and tissue engineering. Journal of Controlled Release. 2014;173:75-88. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.jconrel.2013.10.017.
5. Zhao C., Wang X., Wu L., Wu W., Zheng Y., Lin L., Weng Sh., Lin X. Nitrogen-doped carbon quantum dots as an antimicrobial agent against Staphylococcus for the treatment of infected wounds. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2019;179:17-27. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2019.03.042
6. Joshi P., Mishra R., Narayan R.J. Biosensing applications of carbon-based materials. Current Opinion in Biomedical Engineering. 2021;18:100274. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.cobme.2021.100274
7. Wang Z., Huang P., Bhirde A., Jin A., Ma Y., Niu G., Neamati N., Chen X. A nanoscale graphene oxide-peptide biosensor for real-time specific biomarker detection on the cell surface. Chemical Communications. 2012;48:9768-9770. DOIhttps://doi.org/10.1039/c2cc31974h.
8. Li H-Y., Li D., Guo Y., Yang Y., Wei W., Xie B. On-site chemosensing and quantification of Cr(VI) in in-dustrial wastewater using one-step synthesized fluorescent carbon quantum dots. Sensors and Actuators B: Chemical. 2018;277:30-8. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.snb.2018.08.157
9. Fallah Z., Zare E.N., Ghomi M., Ahmadijokani F., Amini M., Tajbakhsh M., Arjmand M., Sharma G., Ali H., Ahmad A., Makvand P., Lichtfouse E., Sillanpää M., Varma R.S. Toxicity and remediation of pharmaceuticals and pesticides using metal oxides and carbon nanomaterials. Chemosphere. 2021;275:130055. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.130055
10. Юрин В.М., Молчан О.В. Наноматериалы и растения: взгляд на проблему. Труды Белорусского госу-дарственного университета. Серия: Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирова-ния биосистем. 2015;10(1):9-21.
11. Nair R., Mohamed M.S., Gao W., Maekawa T., Yoshida Y., Ajayan P.M., Kumar D.S. Effect of carbon na-nomaterials on the germination and growth of rice plants. Journal of nanoscience and nanotechnology. 2012;12:2212-2220. DOIhttps://doi.org/10.1166/jnn.2012.5775
12. Liu S., Wei H., Li Z., Li S., Yan H., He Y., Tian Z. Effects of graphene on germination and seedling mor-phology in rice. Journal of nanoscience and nanotechnology. 2015;15:2695-2701. DOIhttps://doi.org/10.1166/jnn.2015.9254
13. Zhang P., Zhang R.,Fang X., Song T., Cai X., Liu H., Du S. Toxic effects of graphene on the growth and nu-tritional levels of wheat (Triticum aestivum L.): Short-and longterm exposure studies. Journal of hazardous materials. 2016;317:543-551. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2016.06.019
14. Park S., Kim T., Gwon Y., Kim S., Kim D., Park H.H., Lim K.T., Jeong H.E., Kim K., Kim J. Graphene-Layered Eggshell Membrane as a Flexible and Functional Scaffold for Enhanced Proliferation and Differentiation of Stem Cells. ACS Applied Bio Materials. 2019;2:4242-4248. DOIhttps://doi.org/10.1021/acsabm.9b00525
15. Chen L., Wang C., Yang S., Guan X., Zhang Q., Shi M., Yang S.T., Chen C., Chang X.L. Chemical reduction of graphene enhances in vivo translocation and photosynthetic inhibition in pea plants. Environmental science. Nano. 2019;6:1077-1088. DOIhttps://doi.org/10.1039/C8EN01426D
16. Wang J., Wei Y., Shi X., Gao H. Cellular entry of graphene nanosheets: The role of thickness, oxidation and surface adsorption. RSC Advances. 2013;3:15776-15782. DOIhttps://doi.org/10.1039/C3RA40392K
17. Ratajczak K., Krazinski B.E., Kowalczyk A.E., Dworakowska B., Jakiela S., Stobiecka M. Ternary Interac-tions and Energy Transfer between Fluorescein Isothiocyanate, Adenosine Triphosphate, and Graphene Oxide Nanocarriers. Journal of Physical Chemistry. B 2017;121:6822-6830. DOIhttps://doi.org/10.1021/acs.jpcb.7b04295
18. Ratajczak K., Stobiecka M. Optical Biosensing System for the detection of survivin mRNA in colorectal cancer cells using a graphene oxide carrier-bound oligonucleotide beacon. Nanomaterials. 2018;8:510. DOIhttps://doi.org/10.3390/nano8070510
19. Kim J., Choi K.S., Kim Y., Lim K.T., Seonwoo H., Park Y., Kim D.H., Choung P.H., Cho C.S., Kim S.Y. Bioactive effects of graphene oxide cell culture substratum on structure and function of human adipose-derived stem cells. Journal of biomedical materials research. Part A. 2013;101:3520-3530. DOIhttps://doi.org/10.1002/jbm.a.34659
20. Hummers W.S., Offeman R.E. Preparation of graphitic oxide. Journal of the American Chemical Society. 1958;1339. DOIhttps://doi.org/10.1021/ja01539a017.
21. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 1962;15(3):473-497. DOIhttps://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
22. Trigiano R.N., Gray D.J. Plant Development and Biotechnology. CRC Press LLC. 2005:358.
23. Lloyd G., McCown В. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by shoot tip culture. Combined Proceedings, International Plant Propagators' Society. 1980;30:421-427.
24. Zakharova O., Kolesnikova E., Muratov D.S., Il'inikh I., Tsukanova E., Yevtushenko N., Strekalova N., Gu-sev A. Effects of graphene oxide on white poplar x aspen (Populus alba х Populus tremula) hybrid microsprouts at various growth stages. IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering. 2019;693:012037. DOIhttps://doi.org/10.1088/1757-899X/693/1/012037
25. Zakharova O., Kolesnikova E., Muratov D., Gusev A. Stimulating and toxic effects of graphene oxide on Betula pubescens microclones. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2020;595:012010 DOIhttps://doi.org/10.1088/1755-1315/595/1/012010
26. Muzyka R., Drewniak S., Pustelny T., Chrubasik M., Gryglewicz G. Characterization of Graphite Oxide and Reduced Graphene Oxide Obtained from Different Graphite Precursors and Oxidized by Different Methods Using Ra-man Spectroscopy. Materials. 2018;11(7):1050. DOIhttps://doi.org/10.3390/ma11071050.
27. Rattana, Chaiyakun S., Wititanun N., Nuntawong N., Chindaudom P., Oaew S., Kedkeaw C., Limsuwan P. Preparation and characterization of graphene oxide nanosheets. Procedia Engineering. 2012;32:759-764. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.proeng.2012.02.009.
28. Oh W-Ch., Zhang F-J. Preparation and characterization of graphene oxide reduced from a mild chemical method. Asian Journal of Chemistry. 2011;23(2):875-879.
29. Sasidharan A., Panchakarla L.S., Chandran P., Menon D, Nair Sh., Rao C.N.R., Koyakutty M. Differential nano-bio interactions and toxicity effects of pristine versus functionalized grapheme. Nanoscale. 2011;3(6):2461-2464. DOIhttps://doi.org/10.1039/c1nr10172b
30. Anjum N.A., Singh N., Singh M.K., Sayeed I., Duarte A.C., Pereira E., Ahmad I. Single-bilayer graphene oxide sheet impacts and underlying potential mechanism assessment in germinating faba bean (Vicia faba L.). Science of the Total Environment. 2014;472:834-841. DOIhttps://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2013.11.018
31. Lee G., Kim B.S. Biological reduction of graphene oxide using plant leaf extracts. Biotechnology Progress. 2014;30(2):463-469. DOIhttps://doi.org/10.1002/btpr.1862
32. Ocsoy I., Paret M.L., Ocsoy M.A. Nanotechnology in plant disease management: DNA-directed silver nano-particles on graphene oxide as an antibacterial against Xanthomonas perforans. ACS Nano. 2013;7(10):8972-8980. DOIhttps://doi.org/10.1021/nn4034794
