p.g.t. Ust'-Kinel'skiy, Samara, Russian Federation
p.g.t. Ust'-Kinel'skiy, Samara, Russian Federation
GRNTI 68.41 Ветеринария
OKSO 35.06.01 Сельское хозяйство
The aim of the study was to increase the effectiveness of prevention and therapy of transmissible venereal sarcoma of dogs. The tasks are to distinguish and differentiate the representatives of the microbiocenosis of the gastrointestinal tract and the genital organs of healthy dogs and patients with transmissible venereal sarcoma; to reveal the effectiveness of the probiotic bactistatin use and the antioxidant dihydroquercetin for the bacterial and fungal microflora of dogs. The number of resident microorganisms in the gastrointestinal tract of dogs with trans-missile venereal sarcoma and undergoing therapy with the use of vinkristin was the lowest in comparison with healthy dogs and animals treated with vincrestine in combination with bactistatin and dihydroquercetin. The highest values of the transitory microflora of the gastrointestinal tract were detected for dogs with transmissible venereal sarcoma, whose treatment was performed with vincristine. In the biomaterial, pathogenic cultures of Salmonella enteritidis 1.02×102±0.02 and Pseudomonas aeruginosa 1.08×102±0.02 were also present. Pathogenic cultures of Salmonella enteriti-dis and Pseudomonas aeruginosa have a rather high ability to survive in macroorganism (antilizimic, anti-carnosine activity and biofilm formation ability). Among the dogs studied, the least number of resident and the greatest number of transient microorganisms in the swabs of genital organs was detected in animals with transmissible venereal sarcoma and treated with vincristine. For dogs with transmissible venereal sarcoma and undergoing vincristine treatment in combination with bactistatin and dihydroquercetin, the resident cultures of Lactobacillus delbrueckii 92.8±6.8 and Bifidobacterium bifidum 94.2±7.2 were the most capable of biofilm formation.
dog, sarcoma, microbiocenosis, transmissible, sexually transmitted
В ходе дисбаланса микробиоценоза желудочно-кишечного тракта у собак и кошек происходит снижение резидентной облигатной микрофлоры, активируются условно-патогенные и патогенные микроорганизмы [1, 3].
При дисфункции микробиоценоза у мелких домашних животных часто диагностируются также кератомикозы и поверхностные дерматомикозы [2].
Микроорганизмы, в частности энтеробактерии, устойчивы к стресс факторам как естественного, так и антропогенного происхождения. В следствие этого, они быстро адаптируются к постоянно изменяющимся условиям окружающей среды. При этом в микробиотопах окружающей среды находится свыше сотни условно-патогенных и патогенных микроорганизмов. Развитию инфекции способствует наличие у изолятов микроорганизмов факторов вирулентности, персистенции и антибиотикорезистентности [4-7].
В процессе продуктивной вирусной инфекции у мелких домашних животных условно-патогенные, патогенные бактерии и грибы существенно осложняют течение основной инфекции и часто образуют ассоциативные бактериально-грибково-вирусные микробиоты. В результате в ходе терапии возникает острая необходимость в использовании препаратов как специфической терапии, так и средств, содержащих комплекс биологически активных веществ [8].
Пробиотики на основе метаболитов B. subtillis помимо собственно бактерий-антагонистов содержат также различные биологически активные вещества. Одним из таких комбинированных пробиотиков является бактистатин, обладающий многокомпонентным составом, нормализующим микрофлору и оказывающим стимулирующее действие на неспецифическую реактивность организма в целом [8].
Природным антиоксидантом с комплексом биологически активных веществ является биофлавонид дигидрокверцетин, который оказывает положительное влияние на резидентную микрофлору желудочно-кишечного тракта служебных собак [9].
Повышается эффективность профилактики и терапии трансмиссивной венерической саркомы у собак за счёт применения препаратов специфической терапии в комплексе со средствами неспецифической терапии. В связи с этим мы проведено исследование по выявлению эффективности действия пробиотика бактистатина и дигидрокверцетина на микробиоценоз собак.
Цель исследования – повышение эффективности профилактики и терапии трансмиссивной венерической саркомы у собак.
Задачи исследования – выделить и дифференцировать представителей микробиоценоза желудочно-кишечного тракта и половых органов здоровых собак и больных трансмиссивной венерической саркомой; выявить эффективность применения пробиотика бактистатина и антиоксиданта дигидрокверцетина на бактериальную и грибковую микрофлору собак.
Материал и методы исследования. Объект исследования – здоровые и больные собаки разных пород и пола с выраженными клиническими признаками трансмиссивной венерической саркомы. Материалом для исследования служили фекалии и смывы со слизистых половых органов собак. Исследование проводили в период с 2015 по 2017 гг.
Фекалии собак отбирали для приготовления микробной суспензии, смывы со слизистых половых органов использовали для прямого посева на питательные среды. Отбор биоматериала от больных собак проводили до, во время и после специфической терапии трансмиссивной венерической саркомы. В ходе специфической терапии пяти собакам (первая опытная группа) применяли препарат винкристин, согласно наставлению, другим пяти собакам (вторая опытная группа) винкристин применяли в комплексе с пробиотиком бактистатином и антиоксидантом дигидрокверцетином. Здоровые собаки входили в контрольную группу. Суспензию биоматериала и смывы для получения роста культур бактерий и грибов высевали на дифференциально-диагностические и селективно-элективные питательные среды.
Лактобациллы и бифидобактерии культивировали в чистой культуре на глюкозо-кровяном агаре. Энтерококки высевали на средах Диф-5 и кровяном агаре. Стафилококки культивировали на желточно-солевом агаре (ЖСА) и на кровяном МПА, стрептококки – на глюкозо-кровяном МПА. Пептострептококки выделяли на кровяном МПА с созданием анаэробных условий. Бациллы культивировали на мясо-пептонном агаре и кровяном агаре, псевдомонады – в мясо-пептонном бульоне и на агаре с бриллиантовым зелёным, а коринебактерии – на кровяном теллуритовом агаре и на цистин-теллурит-сывороточной среде. С созданием анаэробных условий культивировали бактероиды на глюкозо-кровяном агаре с добавлением гемина (витамин К).
Эшерихии выделяли в чистой культуре на средах Эндо и кровяном агаре. Протеи выделяли на агар П-1 с полимиксином и солями желчных кислот на скошенном МПА и кровяном МПА, клебсиеллы выделяли на агаре Плоскирева и кровяном МПА. Сальмонеллы выделяли на висмут-сульфитном агаре и железо-сульфитном агаре, в селенитовой среде Leifson (коммерческой и модифицированной), а также в магниевой среде, тетротионатовой среде Мюллера и среде Мюллера-Кауфмана, на сальмонелла-шигелла агаре. Иерсинии выделяли на дифференциально-диагностическом СБТС-агаре и селективном CIN-агаре, на глюкозо-кровяном агаре. Энтеробактеры культивировали на эозинметиленовом агаре, серрации – на пептон-глицериновом агаре, цитробактеры – на висмут-сульфитном агаре и агаре Плоскирева. Хеликобактерии культивировали на полужидком мясо-печёночном-пептонном агаре, а кампилобактерии – на сафранино-железо-новобиоциновой среде.
Материал подвергали первичной микроскопии с флюоресцирующим агентом фторидом кальция, что улучшает качество визуализации структурных компонентов грибов в тканях и является более точным методом скрининга материала. Из проб материала готовили также микосуспензию для высева на селективно-элективные питательные среды. Суспензию материала высевали в чашки Петри на глюкозо-пептон-дрожжевой агар, содержащий твин-80 и липидные наполнители, на агар Сабуро и кровяной МПА. Суспензию материала распределяли одноразовым стерильным микробиологическим г-образным шпателем по поверхности среды в чашке Петри и инкубировали в термостате в течение 10 дней [10].
Чистые культуры микроорганизмов идентифицировали по морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим, серологическим свойствам, а также в ходе проведения ПЦР-анализа. Количество выросших колоний микроорганизмов (КОЕ – колониеобразующая единица) на плотных питательных средах подсчитывали общепринятым методом на приборе ПСБ (прибор счёта бактерий).
Определение факторов патогенности микроорганизмов проводили по общепринятым
методам. Гемолитическую и желатиназную, каталазную активность культур выявляли в ходе
культивирования микроорганизмов на обогащённых средах и путём постановки биохимических тестов. Активность протеаз культур определяли по убыли альбумина после совместной инкубации с исследуемыми микроорганизмами биуретовым методом. Определение факторов персистенции микроорганизмов осуществляли общепринятыми методами. Антилизоцимную и антикарнозиновую активность определяли фотометрическим методом. Способность микроорганизмов к образованию биоплёнок выявляли по степени связывания микроорганизмами кристаллического фиолетового в полистироловых планшетах. Биохимические свойства микроорганизмов изучали постановкой пёстрого ряда со средами Гисса, в биохимических тест-пластинах и в других специфических тестах. Серологические свойства микроорганизмов изучали в реакциях со специфическими диагностическими сыворотками в реакциях агглютинации, связывания комплемента, преципитации. Результаты исследований обрабатывали статистически по общепринятой методике с использованием компьютерной программы Microsoft Excel.
Результаты исследования. В видовом составе микроорганизмов желудочно-кишечного тракта собак среди идентифицированных нами микроорганизмов преобладали лактобациллы и бифидобактерии (табл. 1). Среди транзиторных микроорганизмов найдены кокковые и палочковидные бактерии в ассоциации с дрожжеподобными микрогрибами. Патогенные грамотрицательные сальмонеллы Salmonella enteritidis (Salmonella enterica subsp. enterica serovar enteritidis) и патогенные грамположительные псеудомонады Pseudomonas aeruginosa выявлены только у собак, больных трансмиссивной венерической саркомой и проходивших курс специфической терапии с использованием препарата винкристин.
Таблица 1
Видовой состав микроорганизмов желудочно-кишечного тракта собак
|
Культуры микроорганизмов |
Группы собак |
||||
|
Контрольная |
Первая опытная |
Вторая опытная |
|||
|
Резидентные микроорганизмы |
|||||
|
Enterococcus faecium |
3,62×103±0,02 |
2,10×103±0,02 |
3,58×103±0,03 |
||
|
E. flavescens |
3,94×103±0,05 |
2,04×103±0,03 |
4,12×103±0,05 |
||
|
E. faecalis |
3,06×103±0,08 |
2,58×103±0,08 |
3,78×103±0,06 |
||
|
Peptostreptococcus anaerobius |
3,88×103±0,08 |
3,45×103±0,06 |
4,92×103±0,11 |
||
|
Lactobacillus delbrueckii |
9,52×1010±1,12 |
7,32×1010±1,32 |
8,96×1010±1,08 |
||
|
Bifidobacterium bifidum |
8,76×1010±1,07 |
7,24×1010±0,92 |
8,26×1010±1,06 |
||
|
Escherichia coli |
3,77×104±0,06 |
4,92×104±0,09 |
3,55×104±0,03 |
||
|
Serratia marcescens |
4,18×104±0,15 |
3,06×104±0,08 |
3,98×104±0,07 |
||
|
Bacteroides fragilis |
3,52×104±0,11 |
2,19×104±0,10 |
3,43×104±0,06 |
||
|
Транзиторные микроорганизмы |
|||||
|
Staphylococcus saprophiticus |
4,05×104±0,12 |
5,63×104±0,10 |
3,72×104±0,08 |
||
|
Streptococcus canis |
3,42×104±0,06 |
3,88×104±0,08 |
3,12×104±0,04 |
||
|
Streptococcus entericus |
3,08×104±0,04 |
4,12×104±0,05 |
3,26×104±0,02 |
||
|
Corynebacterium striatum |
2,74×103±0,03 |
3,24×103±0,04 |
2,89×103±0,04 |
||
|
Klebsiella oxytoca |
2,12×103±0,02 |
3,16×103±0,05 |
2,64×103±0,07 |
||
|
Proteus vulgaris |
2,68×103±0,04 |
3,87×103±0,08 |
2,12×103±0,18 |
||
|
Enterobacter cloacae |
4,08×103±0,07 |
5,36×103±0,11 |
4,32×103±0,18 |
||
|
Citrobacter diversus |
5,34×103±0,22 |
5,83×103±0,08 |
4,83×103±0,12 |
||
|
Salmonella enteritidis |
не выявлены |
1,02×102±0,02 |
не выявлены |
||
|
Yersinia enterocolitica |
не выявлены |
0,62×102±0,03 |
не выявлены |
||
|
Bacillus subtillis |
4,38×103±0,08 |
2,74×103±0,22 |
5,62×103±0,06 |
||
|
Helicobacter pylori |
2,08×102±0,03 |
4,32×102±0,04 |
2,12×102±0,05 |
||
|
Campylobacter coli |
1,88×102±0,04 |
2,64×102±0,05 |
0,32×102±0,06 |
||
|
Pseudomonas aeruginosa |
не выявлены |
1,08×102±0,02 |
не выявлены |
||
|
Candida parapsilosis |
2,02×102±0,02 |
4,06×102±0,06 |
1,14×102±0,02 |
||
|
Candida albicans |
0,27×102±0,008 |
2,06×102±0,05 |
0,12×102±0,002 |
||
|
Malassezia pachydermatis |
1,63×103±0,02 |
0,86×103±0,04 |
1,74×103±0,03 |
||
|
Malassezia restricta |
2,44×103±0,03 |
1,73×103±0,02 |
2,08×103±0,02 |
||
Резидентные микроорганизмы, формирующие аутомикробиоценоз желудочно-кишечного тракта, проявляют выраженную колонизационную резистентность за счёт, в том числе, наличия факторов персистенции – антилизоцимная, антикарнозиновая активность и способность к биоплёнкообразованию (табл. 2). В таблице приведены показатели факторов персистенции микроорганизмов у собак, проходивших лечение препаратом винкристин.
Таблица 2
Факторы персистенции у микроорганизмов желудочно-кишечного тракта собак
|
Культуры микроорганизмов |
Факторы персистенции |
||
|
Антилизоцимная |
Антикарнозиновая |
Способность |
|
|
Enterococcus faecium |
2,84±0,04 |
2,35±0,08 |
83,8±4,8 |
|
E. flavescens |
2,08±0,06 |
2,13±0,03 |
86,2±6,4 |
|
E. faecalis |
3,73±0,02 |
3,06±0,03 |
87,3±5,2 |
|
Peptostreptococcus anaerobius |
3,12±0,05 |
3,75±0,09 |
67,2±3,1 |
|
Lactobacillus delbrueckii |
6,33±0,04 |
7,33±0,04 |
95,6±10,3 |
|
Bifidobacterium bifidum |
7,24±0,06 |
6,42±0,06 |
92,3±9,8 |
|
Escherichia coli |
4,38±0,02 |
4,24±0,03 |
76,3±5,2 |
|
Serratia marcescens |
3,88±0,04 |
3,62±0,08 |
71,0±4,6 |
|
Bacteroides fragilis |
3,88±0,04 |
2,78±0,08 |
64,8±3,2 |
|
Staphylococcus saprophiticus |
7,14±0,06 |
6,24±0,02 |
70,8±4,2 |
|
Streptococcus canis |
5,60±0,04 |
4,12±0,02 |
64,3±2,8 |
|
Streptococcus entericus |
4,78±0,03 |
3,92±0,03 |
68,7±3,4 |
|
Corynebacterium striatum |
7,64±0,02 |
6,08±0,03 |
64,8±4,8 |
|
Klebsiella oxytoca |
3,42±0,02 |
4,78±0,02 |
75,4±5,6 |
|
Proteus vulgaris |
4,82±0,03 |
4,26±0,02 |
81,6±4,8 |
|
Enterobacter cloacae |
3,78±0,03 |
5,02±0,02 |
63,8±3,7 |
|
Citrobacter diversus |
3,92±0,02 |
3,38±0,03 |
72,5±6,2 |
|
Salmonella enteritidis |
4,86±0,02 |
5,06±0,02 |
78,4±7,8 |
|
Yersinia enterocolitica |
3,14±0,04 |
4,18±0,04 |
68,3±8,4 |
|
Bacillus subtillis |
3,44±0,05 |
4,52±0,08 |
68,4±4,6 |
|
Helicobacter pylori |
5,74±0,02 |
4,68±0,04 |
80,3±5,7 |
|
Campylobacter coli |
4,08±0,03 |
5,14±0,07 |
62,3±4,6 |
|
Pseudomonas aeruginosa |
7,14±0,03 |
6,38±0,02 |
77,8±4,2 |
|
Candida parapsilosis |
5,38±0,02 |
4,36±0,03 |
62,3±4,2 |
|
Candida albicans |
5,12±0,002 |
4,73±0,02 |
64,7±5,6 |
|
Malassezia pachydermatis |
6,24±0,02 |
7,12±0,04 |
67,5±4,2 |
|
Malassezia restricta |
6,54±0,03 |
6,83±0,02 |
60,8±5,3 |
Видовой состав резидентной микрофлоры половых органов собак представлен Enterococcus faecium, Enterococcus flavescens, Enterococcus faecalis, Lactobacillus delbrueckii, Bifidobacterium
bifidum, Escherichia coli и Bacteroides fragilis, среди которых преобладали лактобациллы и бифидобактерии (табл. 3). Среди транзиторных микроорганизмов половых органов собак, больных трансмиссивной венерической саркомой, выявлена в незначительном количестве Pseudomonas aeruginosa.
Резидентные и транзиторные микроорганизмы половых органов собак обладали также факторами персистенции. Показатели факторов персистенции микроорганизмов половых органов у собак, проходивших лечение винкристином в комплексе с пробиотиком бактистатином и антиоксидантом дигидрокверцетином представлены в таблице 4.
Количество резидентных микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте собак, больных трансмиссивной венерической саркомой и проходивших терапию с использованием препарата винкристин, было наиболее низким по сравнению со здоровыми собаками и животными, которых лечили винкрстином в комплексе с бактистатином и дигидрокверцетином. Наиболее высокие показатели количества транзиторной микрофлоры желудочно-кишечного тракта было выявлено у собак, больных трансмиссивной венерической саркомой, лечение которых проходило винкристином. В биоматериале присутствовали также патогенные культуры Salmonella enteritidis 1,02×102±0,02 и Pseudomonas aeruginosa 1,08×102±0,02. У патогенных культур Salmonella enteritidis и Pseudomonas aeruginosa выявлена достаточно высокая способность к выживаемости в макроорга-низме (антилизоцимная, антикарнозиновая активность и способность к биоплёнкообразованию).
Таблица 3
Видовой состав микроорганизмов половых органов собак
|
Культуры микроорганизмов |
Группы собак |
||||
|
Контрольная |
Первая опытная |
Вторая опытная |
|||
|
Резидентные микроорганизмы |
|||||
|
Enterococcus faecium |
4,72×103±0,03 |
2,63×103±0,06 |
3,92×103±0,04 |
||
|
E. flavescens |
5,38×103±0,04 |
2,86×103±0,04 |
5,12×103±0,03 |
||
|
E. faecalis |
4,18×103±0,08 |
3,18×103±0,06 |
3,08×103±0,02 |
||
|
Lactobacillus delbrueckii |
8,72×109±0,75 |
6,33×108±0,38 |
8,64×109±0,88 |
||
|
Bifidobacterium bifidum |
6,33×109±0,17 |
4,89×108±0,78 |
5,89×109±0,16 |
||
|
Escherichia coli |
1,44×102±0,04 |
2,38×102±0,03 |
1,88×102±0,02 |
||
|
Bacteroides fragilis |
2,18×103±0,02 |
3,54×103±0,06 |
2,72×103±0,08 |
||
|
Транзиторные микроорганизмы |
|||||
|
Staphylococcus saprophiticus |
3,62×103±0,11 |
3,96×103±0,18 |
3,88×103±0,09 |
||
|
Streptococcus canis |
2,75×103±0,08 |
3,12×103±0,08 |
2,92×103±0,07 |
||
|
Streptococcus entericus |
2,38×103±0,02 |
3,82×103±0,08 |
2,44×103±0,02 |
||
|
Corynebacterium striatum |
2,68×102±0,04 |
4,02×102±0,07 |
2,88×102±0,08 |
||
|
Klebsiella oxytoca |
2,26×102±0,02 |
2,92×102±0,06 |
2,18×102±0,02 |
||
|
Proteus vulgaris |
2,67×102±0,02 |
3,85×102±0,08 |
2,54×102±0,03 |
||
|
Enterobacter cloacae |
0,32×102±0,002 |
1,08×102±0,006 |
0,43×102±0,004 |
||
|
Citrobacter diversus |
0,44×102±0,004 |
1,12×102±0,008 |
0,32×102±0,003 |
||
|
Bacillus subtillis |
0,22×102±0,006 |
1,86×102±0,004 |
0,10×102±0,002 |
||
|
Campylobacter coli |
0,16×102±0,003 |
0,83×102±0,006 |
0,12×102±0,006 |
||
|
Pseudomonas aeruginosa |
не выявлены |
1,63×102±0,007 |
не выявлены |
||
|
Candida parapsilosis |
0,38×102±0,008 |
0,56×102±0,008 |
0,24×102±0,006 |
||
|
Candida albicans |
0,12×102±0,002 |
0,83×102±0,006 |
0,08×102±0,004 |
||
|
Malassezia pachydermatis |
0,24×102±0,003 |
0,94×102±0,004 |
0,16×102±0,006 |
||
|
Malassezia restricta |
0,48×102±0,004 |
0,82×102±0,007 |
0,38×102±0,008 |
||
Таблица 4
Факторы персистенции у микроорганизмов половых органов собак
|
Культуры микроорганизмов |
Факторы персистенции |
||
|
Антилизоцимная |
Антикарнозиновая |
Способность |
|
|
Enterococcus faecium |
6,33±0,06 |
6,24±0,08 |
84,5±6,8 |
|
E. flavescens |
8,24±0,05 |
7,38±0,07 |
64,8±6,8 |
|
E. faecalis |
5,02±0,04 |
5,88±0,05 |
72,6±8,8 |
|
Lactobacillus delbrueckii |
7,12±0,06 |
8,16±0,06 |
92,8±6,8 |
|
Bifidobacterium bifidum |
8,04±0,08 |
7,32±0,04 |
94,2±7,2 |
|
Escherichia coli |
5,82±0,04 |
6,18±0,05 |
70,6±8,5 |
|
Bacteroides fragilis |
9,83±0,08 |
8,20±0,08 |
50,6±7,2 |
|
Staphylococcus saprophiticus |
6,83±0,02 |
7,28±0,04 |
74,2±6,8 |
|
Streptococcus canis |
6,42±0,04 |
5,82±0,06 |
72,5±5,8 |
|
Streptococcus entericus |
7,12±0,03 |
6,30±0,08 |
70,6±7,4 |
|
Corynebacterium striatum |
7,72±0,02 |
6,34±0,02 |
65,4±6,2 |
|
Klebsiella oxytoca |
5,32±0,08 |
8,12±0,06 |
62,4±7,5 |
|
Proteus vulgaris |
6,80±0,07 |
7,04±0,03 |
75,6±5,4 |
|
Enterobacter cloacae |
4,33±0,04 |
5,63±0,06 |
72,6±6,4 |
|
Citrobacter diversus |
7,24±0,07 |
6,33±0,08 |
66,4±8,3 |
|
Bacillus subtillis |
8,12±0,02 |
6,92±0,08 |
62,3±8,6 |
|
Campylobacter coli |
10,12±0,08 |
9,32±0,06 |
42,7±8,4 |
|
Candida parapsilosis |
8,38±0,05 |
7,08±0,06 |
52,4±3,6 |
|
Candida albicans |
8,42±0,008 |
9,82±0,009 |
62,6±6,4 |
|
Malassezia pachydermatis |
7,32±0,02 |
7,94±0,03 |
68,6±4,8 |
|
Malassezia restricta |
6,38±0,02 |
6,72±0,005 |
56,2±2,6 |
Среди исследованных собак наименьшее количество резидентных и наибольшее количество транзиторных микроорганизмов в смывах половых органов выявлено у животных, больных трансмиссивной венерической саркомой и проходивших лечение винкристином. У собак, больных трансмиссивной венерической саркомой и подвергавшихся лечению винкристином в комплексе с бактистатином и дигидрокверцетином, наиболее высокой способностью к биоплёнкообразованию отличались резидентные культуры Lactobacillus delbrueckii 92,8±6,8 и Bifidobacterium bifidum 94,2±7,2.
Заключение. Применение винкристина в комплексе с пробиотиком бактистатином и антиоксидантом дигидрокверцетином оказывает наиболее желаемый эффект, поскольку у животных наряду с выздоровлением в полной мере восстанавливается аутомикрофлора желудочно-кишечного тракта и половых органов. В результате аутомикрофлора проявляет антогонистическую способность и естественным путём повышает неспецифическую реактивность организма, в том числе и к возбудителю трансмиссивной венерической саркомы.
1. Molyanova, G. V., The action of dihydroquercetin for the organism of official dogs / G. V. Molyanova, A. I. Akulova // The development of livestock - the basis of food security : mat. National sci.-pract. conf. - Volgograd, 2017. - P. 203-206.
2. Gromova, A. N. Diagnosis of opportunistic infections of dogs and cats / A .N. Gromova // Livestock development is the basis of food security : mat. National sci.-pract. conf. - Volgograd, 2017. - P. 157-161.
3. Sycheva, M. V. Biological effects of antimicrobic substances of animal and bacterial origin : author. dis. … dr. biol. sciences : 06.02.02 / Sycheva Maria Viktorovna. - Ufa, 2016. - P. 1-48.
4. Ermakov, V. V. Resident and transient microflora of stray cats and dogs in the Samara region / V. V. Ermakov // Bulletin Samara SAA. - 2013. - № 1. - P. 15-19.
5. Ermakov, V. V. Microbiological diagnosis of ceratomycosis and superficial dermatomycosis of small domestic animals / V. V. Ermakov // Bulletin Samara SAA. - 2011. - № 1. - P. 35-38.
6. Ermakov, V.V. The microflora of stray cats and dogs in the Samara Region / V. V. Ermakov, A. R. Medve¬deva, A. P. Cherkasova // Advances in science to the agro-industrial complex : coll. of sci. papers. - Samara, 2014. - P. 210-213.
7. Ermakov, V. V. Biological properties of representatives of microbiocenosis of domestic cats and dogs in Samara / V. V. Ermakov // Actual problems of agrarian science and ways to solve them coll. of sci. papers. - Kinel, 2016. - P. 194-198.
8. Ermakov, V. V. Microorganisms that complicate the course of panleukopenia in cats in the Samara region / V. V. Ermakov // Bulletin Samara SAA. - 2015. - № 1. - P. 50-56.
9. Akulova, I. A. The effect of dihydroquercetin on the biological properties of enterococci in utility dogs // I. A. Akulova // Student science - a look into the future : mat. All-Russian sci.-pract. conf. - Krasnoyarsk, 2017. - P. 3-5.
10. Pat. № 163081 Russian Federation, MPK S12M 1/14, A61B 10/02. The disposable sterile microbiological g-shaped pallet / Ermakov B. B. - № 2016100537/14; appl.11.01.2016; publ. 7.10.2016 ; Bull. № 19.
