Российская Федерация традиционно является одной из трех ведущих держав мира, имевших развитую отрасль звероводства, игравшую важную роль в экономическом развитии страны и обеспечении населения натуральной, экологически чистой продукцией. Сейчас в условиях государственной поддержки сельского хозяйства и проводимой политики импортозамещения появилась реальная возможность для возрождения отечественного звероводства, в частности норководства[1, 5, 7, 8].Существующий в этой отрасли дефицит качественных и безопасных для организма кормов и пребывание животных в условиях, резко отличающихся от естественных, привели к снижению их продуктивных качеств и общей устойчивости к условиям окружающей среды [9, 10]. В связи с этим, особо важным представляется поиск натуральных источников белка и включение их в рацион кормления животных с целью устранения негативных последствий его недостатка, который определяет в конечном итоге и качественные показатели получаемого пушно-мехового сырья [8, 10].При традиционном внедрении в основной рацион пушных зверей мясокостной и рыбной муки организм животного тратит значительную часть энергии на их переработку и усвоение, что существенно снижает экономическую эффективность ее применения в практике клеточного звероводства, а, следовательно, для получения высокоэффективных кормовых добавок белоксодержащие непищевые отходы необходимо подвергать гидролизу, так как количество аминокислот и их соотношение в рационе являются главными факторами, определяющими его полноценность. Теоретические предпосылки гидролиза белков и их практическая реализация отражены в данных целого ряда исследователей, однако практически отсутствуют сведения о влиянии продуктов гидролиза на морфологическую картину пищеварительного аппарата, как системы, непосредственно реагирующей на изменения традиционного режима кормления. Следует подчеркнуть, что структурная характеристика органов пищеварительного аппарата во многом отражает физиологические процессы, протекающие в организме и обуславливает формирование всех его систем, включая общий покров, что непосредственно отражается и на товарно-технологических показателях получаемой шкурковой продукции [3, 4, 7, 9, 10].Цель исследований – морфологическое обоснование эффективности применения белкового гидролизата в пушном звероводстве. Задачи исследований: 1) Охарактеризовать структурное состояние кишечного канала норки клеточного содержания в условиях традиционного кормления;2) Выявить сравнительные макроморфологические и морфометрические особенности кишечника у зверей подопытной и контрольной групп;3) Установить микроморфологические показатели стенки кишечного канала, корреляционные отношения ее слоев у сравниваемых групп животных;4) Представить комплекс структурных преобразований кишечного канала у норки при использовании белкового гидролизата;5) Охарактеризовать структурное состояние кожного покрова при введении в рацион белкового гидролизата с целью обоснования эффективности его применения в клеточном норководстве.Материал и методы исследования. Работа является фрагментом комплексных исследований кафедры анатомии и гистологии животных имени профессора А. Ф. Климова и кафедры диагностики болезней, терапии, акушерства и репродукции животных ФГБОУ ВО МГАВМиБ – МВА имени К. И. Скрябина. Экспериментальные исследования выполнены на кафедре анатомии и гистологии животных имени профессора А. Ф. Климова и на базе ОАО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» в период 2015-2018 гг. Научно-производственную часть эксперимента осуществляли методом подбора групп-аналогов по общепринятым методикам [2, 7]. Объектом исследования избран представитель семейства Mustelidae – американская норка. Экспериментальные группы сформированы из клинически здоровых животных с учетом происхождения, пола (самцы), возраста, живой массы и интенсивности роста в подготовительный период.Экспериментальных животных карантинировали в течение 14 суток, проводили общеклиническое исследование, включающее оценку состояния кожного покрова.Сформировано 3 группы животных по 20 голов, контрольная (I) и две опытные (II, III). Три раза в неделю в течение 60 суток в утреннее время животные II и III групп получали корм (основной рацион), содержащий белковый гидролизат, в то время как животные I (контрольной) группы – только основной рацион (табл. 1).Таблица 1Схема проведения экспериментаГруппыКоличество головДоза, мг/кг живой массыПериодыПодготовительныйУчетныйЗаключительный1 (контроль)20-ОРОРОР2201ОРОР + гидролизатОР3201,5ОРОР + гидролизатОРПродолжительность дней76045Примечание: здесь и далее ОР – основной рацион.Содержание и кормление животных соответствовали зоотехническим нормам, завершение эксперимента соответствовало плановой хозяйственной эвтаназии с целью получения шкурковой продукции.Результаты исследований. На первом этапе исследований проведено определение живой массы животных экспериментальных групп с целью оценки интенсивности их роста на этапе завершения эксперимента. Сравнительный анализ результатов показал превосходство по данному показателю представителей опытных групп, по сравнению с контрольной. Это может свидетельствовать о стимуляции ростовых процессов в организме пушных зверей при введении в рацион белкового гидролизата и согласуется с данными, полученными на других животных. Так, в III опытной группе отмечена наибольшая (на 9%) тенденция к увеличению живой массы, в то время как во II группе увеличение этого показателя, по сравнению с группой контроля, составило 4% (табл. 2). Таблица 2 Показатели живой массы исследуемых животных на этапе завершения эксперимента, г (Р≤0,05)I группа (контроль)II группаIII группа1220,2±26,11348,2±21,31364,0±35,6 При сравнительном морфологическом анализе кишечника норок экспериментальных групп установлено, что показатели относительной длины его отделов в сравниваемых группах не имеют достоверных различий (табл. 3).Таблица 3Макроморфометрические показатели кишечника норки экспериментальных групп, см (Р≤0,05)Сегмент кишечникаГруппа животныхI группа (контроль)II группаIII группаТонкий отдел176,22±2,61176,71±3,55176,44±3,47Двенадцатиперстная кишка16,21±1,1316,62±1,1516,36±0,92Тощая кишка139,62±4,18139,89±3,18139,43±4,19Толстый отдел15,53±1,2915,45±1,2415,42±1,31Ободочная кишка11,21±1,1811,96±1,1411,24±1,15Общая длина193,82±3,35193,91±2,15194,38±3,22 При анализе микроморфометрических показателей стенки двенадцатиперстной кишки животных опытных групп, по сравнению с контрольными, выявлено, что в ее слизистой оболочке возрастают толщина эпителиального слоя, длина ворсин и глубина крипт, а также недостоверно утолщается мышечная оболочка. При этом животные третьей группы опережают остальных по изучаемым морфометрическим параметрам, в то время как животные второй незначительно ей уступают (табл. 4, рис. 1).Таблица 4Микроморфологические показатели стенки двенадцатиперстной кишки норки опытных групп,мкм (Р≤0,05)Показатель Экспериментальные группыI группа (контроль)II группаIII группаСлизистая оболочкаЭпителиальный слой816,0±23,8945,2±19,7979,1±30,1Подслизистый слой72,6±6,967,2±6,4*82,1±9,5*Общая толщина слизистой оболочки901,0±26,61020,1±16,81060,0±22,4Высота ворсин480,2±17,6670,1±15,1707,2±13,3Глубина крипт349,3±19,3371,1±19,2*399,3±18,2*Мышечная оболочкаЦиркулярный слой91,9±6,2105,2±7,1*106,0±5,4*Продольный слой36,1±5,652,7±4,153,4±8,3Общая толщина мышечной оболочки127,5±8,0157,4±9,8159,3±8,6Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны.   абв Рис. 1. Структурная организация стенки двенадцатиперстной кишки у норок экспериментальных групп: а – 2 группа; б – 3 группа; в – контроль; 1 – слизистая оболочка; 2 – подслизистый слой;3 – мышечная оболочка (гематоксилин и эозин, об. 10, ок. 10) Микроморфометрические показатели структур слизистой оболочки тощей кишки(табл. 5, рис. 2) зверей всех экспериментальных групп уступают таковым двенадцатиперстной кишки. По изучаемым показателям слизистой и мышечной оболочек, животные групп, получавшие белковый гидролизат, недостоверно опережали животных контрольной группы. Обращает на себя внимание утолщение циркулярного слоя, по сравнению с продольным, в мышечной оболочке кишечной стенки, у подопытных зверей.Таблица 5Микроморфологические показатели стенки тощей кишки норки экспериментальных групп,мкм (Р≤0,05)Показатель Экспериментальные группыI группа (контроль)II группаIII группаСлизистая оболочкаЭпителиальный слой804,1±20,7888,3±27,6877,0±26,3Подслизистый слой72,8±9,865,6±2,7*56,1±2,2*Общая толщина слизистой оболочки876,4±23,7952,4±11,7948,1±24,6Высота ворсин498,3±23,4664,2±29,4598,1±22,9Глубина крипт397,0±33,4267,7±17,8276,3±28,1Мышечная оболочкаЦиркулярный слой68,8±6,1129,5±10,997,2±6,9Продольный слой25,4±4,436,5±12,3*27,8±4,6*Общая толщина мышечной оболочки103,1±8,1153,2±25,7130,3±10,6Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны.   аб в Рис. 2. Структурная организация стенки тощей кишки у норок экспериментальных групп: а – 2 группа; б – 3 группа; в – контроль. 1 – слизистая оболочка; 2 – подслизистый слой; 3 – мышечная оболочка. (гематоксилин и эозин, об.10, ок.10)     В ободочном сегменте толстого отдела кишечника (табл. 6, рис. 3) у норок, получавших белковый гидролизат, установлено утолщение слизистой и мышечной оболочек, что косвенно свидетельствует об усилении функциональной активности и моторной функции изучаемого отдела кишечника у подопытных зверей, по сравнению с животными контрольной группы, при этом представители второй группы по микроморфометрическим параметрам опережали аналогов из третьей.   Таблица 6Микроморфологические показатели стенки ободочной кишки норки опытных групп,мкм (P≤0,05)Показатель Экспериментальные группыI группа (контроль)II группаIII группаСлизистая оболочкаЭпителиальный слой471,23±39,34665,22±52,65545,48±57,21Подслизистый слой129,34±60,75227,43±13,64215,32±6,49Общая толщина слизистой оболочки612,75±67,71907,13±26,95683,56±32,12Мышечная оболочкаЦиркулярный слой92,23±3,32172,34±25,82149,45±11,33Продольный слой31,35±4,8851,33±6,8445,36±8,52Общая толщина мышечной оболочки122,67±4,94229,22±24,64190,45±19,82   абв Рис. 3. Структурная организация стенки ободочной кишки у норок экспериментальных групп: а – 2 группа; б – 3 группа; в – контроль; 1 – слизистая оболочка; 2 – подслизистый слой;3 – мышечная оболочка; 4 – лимфоидная ассоциированная ткань (гематоксилин и эозин, об. 10, ок. 10) У всех зверей исследуемых групп установлено перераспределение лимфоидной ассоциированной ткани в сторону увеличения в толстом отделе кишечника, по сравнению с тонким. Более того, ее представительство возрастает у животных второй и третьей опытных групп, что позволяет сделать предположение о возможном усилении локального иммунного ответа у пушных зверей, получавших гидролизат, по сравнению с контрольными аналогами. При оценке влияния белкового гидролизата на состояние кожного покрова, определяющего экономическую эффективность норководства, установлено, что по показателю его суммарной толщины звери, получавшие белковый гидролизат, достоверно опережают контрольных сверстников (табл. 7). Таблица 7 Суммарная толщина кожного покрова, мкм P ≤0,05Экспериментальные группыОбщая толщина кожного покроваI (контроль)1145,6±34,4II1197,8±48,3*III1284,7±44,2Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны. Согласно полученным данным, этот показатель достигает максимального значенияв 3-й группе, опережая на 11% показатель контрольной группы (1145,6±34,4 мкм). Во 2-й группе зарегистрировано увеличение толщины кожного покрова на 7%. Относительная толщина эпидермиса во всех изучаемых группах составляла от 2,4 до 2,8% (табл. 8).Таблица 8Толщина эпидермиса кожного покрова норки, мкм P ≤0,05Экспериментальные группыТолщина эпидермиса, мкм% отношение к общей толщине кожиI (контроль)32,3±1,42,8II31,6±1,4*2,6*III29,8±0,9*2,4*Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны.Вместе с тем, животные опытных групп уступали своим контрольным аналогам по степени развития эпидермальной ткани. Так, уменьшение толщины эпидермиса было наиболее выражено у животных 3-й группы (29,8±0,9 мкм), что на 7,7% меньше, чем у контрольных аналогов (32,3±1,4).Во 2-й группе этот показатель всего на 2,2% уступает представителям группы контроля (Р<0,05). Общеизвестно, что глубина залегания волосяных фолликулов является одним из важнейших морфологических показателей, отражающих степень зрелости волосяного покрова, а также определяющих в конечном итоге стоимость готовой продукции (табл. 9, рис. 4, 5).Таблица 9Глубина залегания волосяных фолликулов, мкм P≤0,05Экспериментальные группыГлубина залегания волосяных фолликуловI (контроль)680,0±17,2II группа660,7 ±30,8*III группа636,4± 12,2Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны.  абРис. 4. Структурная организация кожного покрова норки контрольной (а) и опытной (б) групп (СЭМ x 100)  абвРис. 5. Микроморфология кожного покрова норки: а – контрольная группа; б – II группа; в – II группа (гематоксилин и эозин. Об. 10,ок. 10) Представленные данные свидетельствуют, что все опытные группы зверей характеризуются снижением, по сравнению с контрольной, глубины залегания волосяных фолликулов, лидируют по этому показателю представители III группы, получавшие в основном рационе белковый гидролизат в максимальной дозе.Важнейшим критерием, отражающем густоту волосяного покрова, является количество волос в пучке. Общеизвестно, что существует биологическая закономерность, согласно которой густота волосяного покрова обратно пропорциональна толщине эпидермиса. Проведенные микроморфометрические исследования согласуются с данной закономерностью (табл. 10, рис. 6). Таблица 10Количество волос в пучке и толщина эпидермиса кожного покрова норки (P≤0,05)Экспериментальные группыТолщина эпидермиса, мкмКоличество волос в пучке, шт.I (контрольная) группа32,3±1,419,0±0,8II группа29,8±0,9*19,4±0,9*III группа31,6±1,0*20,6±0,9*Примечание: * – различия между сравниваемыми величинами недостоверны. абвРис. 6. Микроархитектоника волосяного покрова норки: а – контрольная группа; б – II группа; в – III группа; 1 – направляющие волосы; 2 – остевые волосы;3 – пуховые волосы (гематоксилин и эозин. Об. 10,ок. 10) При сравнительном анализе опытных групп животных установлено, что количество волос в пучке (при одновременном уменьшении толщины эпидермиса) достигает максимальных значений у животных III группы, у которых толщина эпидермиса уменьшалась на 2,2%, а число волос в пучке возрастало на 16,9% по сравнению с контрольными аналогами. У зверей II группы выявлено утолщение эпидермиса на 7,7% по сравнению с контролем, в то же время количество волос в пучке увеличивалось на 2,1%.Заключение. На основании проведенных исследований было установлено:1. Нормативные макро- и микроморфологические, морфометрические показатели кишечного канала у американской норки, являющиеся базовыми в диагностике его клинико-физиологического состояния, а также оценке эффектов препаратов, стимулирующих ростовые и метаболические процессы.2. У зверей, получавших в качестве добавки к основному рациону белковый гидролизат, состояние кишечника и топографически сопряженных органов находятся в пределах анатомической нормы. Патологических морфофункциональных изменений не выявлено.3. У норок опытных групп, получавших в составе рациона белковый гидролизат, установлены морфологические преобразования стенки кишечного канала адаптационного генеза, направленные на усиление его всасывательной способности, барьерной и моторной функций.4. Увеличение всасывательной поверхности выражается в достоверном (P≤0,05) удлинении кишечных ворсин, уплотнении крипт и их углублении; активизация барьерной функции кишечника сопровождается возрастанием в его стенке представительства лимфоидной ассоциированной ткани, а моторной функции – суммарным утолщением мышечной оболочки.5. Стимулирующее влияние белкового гидролизата на ростовые и метаболические процессы кожного покрова выражается в активизации процесса ремоделирования его структур и подтверждается увеличением у зверей опытных групп, по сравнению с контрольными аналогами, показателей его общей толщины, уменьшением толщины эпидермиса и глубины залегания волосяных фолликулов, а также возрастанием количественного представительства волос в пучке.